top of page
WSL-1565
AB-2550

Cellgraph AB-3000B

  1. H. Hoshino, Y. Nakajima dhe Y. Ohmiya, etiketa e shkrirjes Luciferase-YFP me emetim të përmirësuar për imazhin e luminescencës me një qelizë të vetme. Nature Methods, 4 (8), 637-639 (2007)[PubMed]

  2. C. Wu, K. Mino, H. Akimoto, M. Kawabata, K. Nakamura, M. Ozaki dhe Y. Ohmiya, Imazhe in vivo me luminescencë të kuqe të largët të një biomarkeri të bazuar në BRET nga Cypridina bioluminescence në një ngjyrë organike. Proc. Natl. Akad. Shkencë. USA, 106(37), 15599-15603 (2009)[PubMed]

  3. Y. Nakajima, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Noguchi, H. Hoshino, K. Niwa, VR Viviani dhe Y. Ohmiya, Luciferaza e përmirësuar e brumbullit për imazhe të biolumineshencës me rezolucion të lartë. PLoS One, 5(4), e10011 (2010)[PubMed]

  4. H. Kwon, T. Enomoto, M. Shimogawara, K. Yasuda, Y. Nakajima dhe Y. Ohmiya, Imazhi i biolumineshencës së shprehjes së gjeneve të dyfishta në nivelin e një qelize të vetme. Biotechniques, 48 (6), 460-462 (2010) [PubMed]

  5. X. Li, Y. Nakajima, K. Niwa, VR. Viviani dhe Y. Ohmiya, Krimba hekurudhore me emetim të kuq të përmirësuar për analizat biologjike dhe bioimagji. Protein Sci., 19, 26-33 (2010)[PubMed]

  6. Y. Nakajima dhe Y. Ohmiya, Analizat e biolumineshencës: analiza e luciferazës shumëngjyrëshe, analiza e luciferazës së sekretuar dhe analiza e luciferazës imazherike. Ekspert. Opinion. Drug Discov., 5(9), 835-849 (2010)[PubMed]

  7. H. Kwon, Y. Ohmiya, K. Honma, S. Honma, T. Nagai, K. Saito dhe K. Yasuda, Lëkundjet e sinkronizuara të ATP kanë një rol kritik në kondensimin parakondrogjenik gjatë kondrogjenezës. Sëmundja e vdekjes së qelizave, 3. e278 (2012)[PubMed]

  8. C.Wu, KY. Wang, X. Guo, M. Sato, M. Ozaki, S. Shimajiro, Y. Ohmiya dhe Y. Sasaguri, Metodat e shpejta të zbulimit të molekulës së synuar në imunohistologji duke përdorur një sondë biolumineshence. Luminescence, 28 (1), 38-43 (2013)[PubMed]

  9. HK. Choe, HD. Kim, SH. Park, HW. Lee, JY. Park, JY. Seong, SL. Lightman, GH. Son dhe K. Kim, Aktivizimi sinkron i transkriptimit dhe sekretimit të gjenit të hormonit çlirues të gonadotropinës nga stimulimi pulsativ i kisspeptinës. Proc. Natl. Akad.Sci. SHBA,110(14),5677-5682 (2013)[PubMed]

  10. HJ. Kwon, Y. Ohmiya dhe K. Yasuda, Sistemi me dy ngjyra për monitorimin e njëkohshëm të dinamikës ndërqelizore Ca2+ dhe ATP. anale. Biochem., 430 (1), 45-47 (2012)[PubMed]

  11. S. Koinuma, T. Asakawa, M. Nagano, K. Furukawa, M. Sujino, K. Masumoto, Y. Nakajima, S. Hashimoto, K. Yagita, Y. Shigeyoshi, Diferenca rajonale e periudhës cirkadiane në bërthamën suprakiazmatike të qendra cirkadiane e gjitarëve. euro. J. Neurosci., 38 (6), 2832-41 (2013)[PubMed]

  12. SK. Chun, J. Jang, S. Chung, H. Yun, NJ. Kim, JW. Jung, GH. Djali, YG. Suh dhe K. Kim, Identifikimi dhe Vërtetimi i Inhibitorëve të Kriptokromit që Modulojnë Orën Cirkadiane Molekulare. ACS Kimi. Biol., 9(3), 703-10 (2014)[PubMed]

  13. M. Yasunaga, Y. Nakajima dhe Y. Ohmiya, Analiza e imazhit të biolumineshencës me dy ngjyra duke përdorur luciferazat e brumbujve që lëshojnë jeshile dhe të kuqe në rezolucion nënqelizor. anale. Bioanale. Chem., 406 (23), 5735-5742 (2014)[PubMed]

  14. D. Ono, S. Honma dhe K. Honma, Kriptokromet janë kritike për zhvillimin e ritmeve koherente cirkadiane në bërthamën suprakiazmatike të miut. Nat. Komuni., 4, 1666 (2013)[PubMed]

  15. M. Yasunaga, K. Murotomi, H. Abe, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Ohbayashi, M. Oshimura, T. Noguchi, K. Niwa, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Analiza e reporterëve me luciferazë shumë të ndjeshme duke përdorur një sekuencë e fuqishme destabilizimi e kalpainës 3. J. Biotechnol., 194, 115-123 (2015)[PubMed]

  16. J. Koo, HK. Choe, HD. Kim, SK. Chun, GH. Son, K. Kim, Efekti i Mefloquine, një bllokues i kryqëzimit të hendekut, në lëkundjen e gjenit të periudhës cirkadiane 2 në bërthamën suprakiazmatike të miut Ex Vivo. Endokrinol. Metab., 30 (3), 361-370 (2015)[PubMed]

  17. TI. Tokuda, D. Ono, B. Ananthasubramaniam, S. Honma, K. Honma dhe H. Herzel, Coupling Controls the Synchrony of Clock Cells in Development dhe Knockouts. Biofiza. J., 109 (10), 2159-2170 (2015)[PubMed]

  18. M. Yasunaga, Y. Fujita, R. Saito, M. Oshimura dhe Y. Nakajima, Monitorimi i vazhdueshëm afatgjatë i citotoksicitetit në sferoidet 3D të hepatociteve që shprehin luciferazën e brumbullit me matje të biolumineshencës jodestruktive. BMC Bioteknol., 17(1):54 (2017)[PubMed]

  19. T. Enomoto, H. Kubota, K. Mori, M. Shimogawara, M. Yoshita, Y. Ohmiya dhe H. Akiyama, Imazhe absolute bioluminescence në nivelin njëqelizor me një sinjal drite në nivelin Attowatt. Bioteknika, 64 (6), 270-274 (2018)[PubMed]

  20. TI. Tokuda, D. Ono, S. Honma, K. Honma, H. Herzel, Koherenca e ritmeve cirkadiane në SCN rregullohet nga ndërveprimi i dy faktorëve bashkues. Kompjuter PLoS. Biol., 14(12), e1006607 (2018)[PubMed]

​

Kronos HT (WSL-1565)

  1. (Citotoksiciteti) S. Wakuri, K. Yamakage, Y. Kazuki, K. Kazuki, M. Oshimura, S. Aburatani, M. Yasunaga dhe Y. Nakajima, Korrelacioni ndërmjet intensitetit të luminescencës dhe citotoksicitetit në analizën e citotoksicitetit me bazë qelize duke përdorur luciferazën. anale. Biochem., 522, 18-29 (2017)[PubMed]

  2. (Stresi oksidativ) Y. Tabei, K. Murotomi, A. Umeno, M. Horie, Y. Tsujino, B. Masutani, Y. Yoshida, Y. Nakajima, Vetitë antioksiduese të 5-hidroksi-4-fenil-butenolidit nëpërmjet aktivizimit e rrugës sinjalizuese Nrf2/ARE. Ushqim Kimi. Toxicol., 107 (A), 129-137 (2017)[PubMed]

  3. (Micro ARN) Y. Mie, Y. Hirano, K. Kowata, A. Nakamura, M. Yasunaga, Y. Nakajima dhe Y. Komatsu, Kontrolli i funksionit të oligonukleotideve anti-microRNA duke përdorur duplekse të ndërlidhura ndërvargësh, Mol. Aty. Acidet nukleike, 10, 64-74 (2018)[PubMed]

  4. (Anti-inflamacion) P. Saiki, Y. Kawano, Y. Nakajima, LJLD. Van Griensven dhe K. Miyazaki, Raportues i ri dhe i qëndrueshëm me dy ngjyra të IL-6 dhe IL-10, që rrjedhin nga RAW 264.7 për shqyrtimin anti-inflamator të produkteve natyrore. Int. J. Mol. Sci., 20(18), 4620 (2019)[PubMed]

​

Kronos Dio AB-2550

  1. (Hormon, CRE) PJ He, Y. Fujimoto, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Monitorimi në kohë reale i sinjalizimit të proteinës lidhëse të elementit të përgjigjes së cAMP në qelizat granulosa të derrit të moduluara nga faktorët ovarian. Mol. Qelizë. Biochem., 290 (1-2), 177-184 (2006)[PubMed]

  2. (Heshtja e gjeneve nga siRNA) F. Sato, M. Kurokawa, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Heshtja e gjeneve të miostatinës në diferencimin e mioblasteve embrionale të pulës nga ARN-ja e vogël ndërhyrëse. Jam. J. Physiol., Cell physiol., 291 (3), C538-C545 (2006)[PubMed]

  3. (Gjeni i orës) I. Kwon, J. Lee, SH Chang, NC Jung, BJ Lee, GH Son, K. Kim dhe KH Lee, BMAL1 shuttling kontrollon transaktivizimin dhe degradimin e heterodimerit CLOCK/BMAL1. Mol. Qelizë. Biol., 26(19), 7318-7330 (2006)[PubMed]

  4. (Gjeni i orës) A. Fujioka, N. Takashima dhe Y. Shigeyoshi, gjenerimi i ritmit cirkadian në një linjë qelizore glioma. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 346 (1), 169-174 (2006)[PubMed]

  5. (Gjeni i orës) S. Nishide, S. Honma, Y. Nakajima, M. Ikeda, K. Baba, Y. Ohmiya dhe K. Honma, Sistemi i ri raportues për shprehjet Per1 dhe Bmal1 zbuloi ritme të vetëqëndrueshme cirkadiane në indet periferike. Genes Cells, 11, 1173-1182 (2006) [PubMed]

  6. (Gjeni i orës) PJ He, M. Hirata, N. Yamauchi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Ndërprerja e orës cirkadiane në qelizat diferencuese nga indet riprodhuese të minjve, siç identifikohet nga sistemi i monitorimit në kohë reale in vitro. J. Endocrinol., 193, 413-420 (2007)[PubMed]

  7. (Hormone, PRE) H. Fukuda, PJ He, K. Yokota, T. Soh, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Shprehja e varur nga progesteroni dhe e pavarur e gjenit të tipit I të rezistencës ndaj shumë ilaçeve në qelizat granulosa të derrit. Mol. Qelizë. Biochem., 298, 179-186 (2007)[PubMed]

  8. (Gjeni i orës) PJ He, M. Hirata, N. Yamauchi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Rregullimi gonadotropik i orës cirkadiane në qelizat granuloze të miut. Mol. Qelizë. Biochem., 302, 111-118 (2007)[PubMed]

  9. (Gjeni i orës) T. Ohno, Y. Ohnishi dhe N. Ishida, Një element i ri E4BP4 nxit shprehjen cirkadiane të mPeriod2. Nucleic Acids Res., 35(2), 648-655 (2007)[PubMed]

  10. (gjeni i orës) HS Shim, H. Kim, J. Lee, GH Son, S. Cho, TH Oh, SH Kang, DS Seen, KH Lee dhe K. Kim, Aktivizimi i shpejtë i CLOCK nga ndërmjetësimi i proteinës kinazës C të varur nga Ca2þ rivendosja e orës cirkadiane të gjitarëve. EMBO rep., 8, 366-371 (2007)[PubMed]

  11. (Gjeni i orës) J. Hirayama, S. Sahar, B. Grimaldi, T. Tamaru, K. Takamatsu, Y. Nakahata dhe P. Sassone-Corsi, acetilimi i ndërmjetësuar nga ORA i BMAL1 kontrollon funksionin cirkadian. Nature, 450, 1086-1090 (2007)[PubMed]

  12. (Luciferaza me dy ngjyra, gjen i orës) T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Monitorimi i njëkohshëm i modeleve të shprehjes së pavarur të gjeneve në dy lloje fibroblastesh të bashkëkulturuara me luciferaza të ndryshme që lëshojnë ngjyra. BMC Bioteknol., 8:40 (2008)[PubMed]

  13. (gjeni i orës) M. Akashi, N. Hayasaka, S. Yamazaki dhe K. Node, proteina kinaza e aktivizuar nga mitogjeni është një komponent funksional i sistemit autonom cirkadian në bërthamën suprakiazmatike. J. Neurosci., 28(18), 4619-4623 (2008)[PubMed]

  14. (DDS, transfeksioni i gjenit) S. Takae, K. Miyata,  M. Oba, T. Ishii, N. Nishiyama, K. Itaka, Y. Yamasaki, H. Koyama dhe K. Kataoka, micela polipleksi të shkëputshëm nga PEG bazuar në katiomerë bllok të lidhur me disulfid si vektorë të gjeneve jovirale bioresponsive. J. Am. Kimik. Soc., 130, 6001-6009 (2008)[PubMed]

  15. (Gjeni i orës) Y. Onishi, S. Hanai, T. Ohno, Y. Hara dhe N. Ishida, Lidhja ritmike SAF-A qëndron në themel të transkriptimit cirkadian të gjenit Bmal1. Mol. Qelizë. Biol., 28(10), 3477-3488 (2008)[PubMed]

  16. (Gjeni i orës) J. Lee, Y. Lee, MJ Lee, E. Park, SH Kang, CH Chung, KH Lee dhe K. Kim, Modifikimi i dyfishtë i BMAL1 nga SUMO2/3 dhe ubiquitin promovon aktivizimin cirkadian të CLOCK/BMAL1 komplekse. Mol. Qelizë. Biol., 28(19), 6056-6065 (2008)[PubMed]

  17. (Gjeni i orës) A. Yoshikawa, H. Shimada, K. Numazawa, T. Sasaki, M. Ikeda, M. Kawashima, N. Kato, K. Tokunaga dhe T. Ebisawa, Krijimi i linjave qelizore njerëzore që tregojnë ritmet cirkadiane të biolumineshencës . Neurosci. Lett., 446, 40-44 (2008)[PubMed]

  18. (Gjeni i orës) Y. Yamanaka, S. Honma dhe K. Honma, Ekspozimet e planifikuara ndaj një mjedisi të ri me një rrotë lëvizëse përshpejtojnë në mënyrë diferenciale ri-tërheqjen e orëve periferike të minjve në cikle të reja dritë-errësirë. Gjenet në qeliza, 13, 497-507 (2008)[PubMed]

  19. (Gjeni i orës) N. Kon, T. Hirota, T. Kawamoto, Y. Kato, T. Tsubota dhe Y. Fukada, Aktivizimi i sinjalizimit të TGF-β/aktivinës rivendos orën cirkadiane përmes induksionit të shpejtë të transkripteve të dhjetorit. Nature Cell Biol., 10(12), 1463-1469 (2008)[PubMed]

  20. (DDS, transfeksioni i gjenit) M. Oba, K. Aoyagi, K. Miyata, Y. Matsumoto, K. Itaka, N. Nishiyama, Y. Yamasaki, H. Koyama dhe K. Kataoka, micelat polipleks me ligande peptide RGD ciklike dhe lidhjet e kryqëzuara disulfide që drejtojnë transfeksionin e zgjeruar nëpërmjet trafikimit të kontrolluar ndërqelizor. Mol. Pharm., 5 (6), 1080-1092 (2008)[PubMed]

  21. (Gjeni i orës) K. Ohsaki, K. Oishi, Y. Kozono, K. Nakayama, KI Nakayama dhe N. Ishida, Roli i β-TrCP1 dhe β-TrCP2 në gjenerimin e ritmit cirkadian duke ndërmjetësuar degradimin e proteinës së orës PER2. J. Biochem., 144 (5), 609-618 (2008)[PubMed]

  22. (Gjeni i orës) S. Nishide, S. Honma dhe K. Honma, Pacemakeri cirkadian në bërthamën e kultivuar suprakiazmatike nga minjtë e vegjël është shumë i ndjeshëm ndaj shqetësimeve të jashtme. euro. J. Neurosci., 27 (19), 2686-2690 (2008)[PubMed]

  23. (Gjeni i orës) F. Yang, Y. Nakajima, M. Kumagai, Y. Ohmiya dhe M. Ikeda, Mekanizmi molekular që rregullon shprehjen autonome cirkadiane të Topoizomerazës I në qelizat NIH3T3. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 380 (1), 22-27 (2009)[PubMed]

  24. (Gjeni i orës, Hormoni) S. Koinuma, K. Yagita, A. Fujioka, N. Takashima, T. Takumi dhe Y. Shigeyoshi, Rivendosja e ritmit cirkadian nga Prostaglandina J2 është dukshëm e varur nga faza. FEBS Lett., 583, 413-418 (2009)[PubMed]

  25. (Apoptoza) A. Kanno, Y. Umezawa dhe T. Ozawa, Zbulimi i apoptozës duke përdorur luciferazën ciklike në gjitarët e gjallë. Metodat Mol. Biol., 574, 105-114 (2009)[PubMed]

  26. (Gjeni i orës, Hormoni) M. Hirata, PJ. Ai, N. Shibuya, M. Uchikawa, N. Yamauchi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Progesteroni, por jo estradioli, sinkronizon oshilatorin cirkadian në qelizat stromale endometriale të mitrës. Mol. Qelizë. Biochem., 324 (1-2), 31-38 (2009)[PubMed]

  27. (Diferencimi) M. Kurokawa, F. Sato, S. Aramaki, T. Soh, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Monitor i veprimit autokrin të miostatinës gjatë diferencimit të mioblasteve embrionale të pulës në miotuba: efekti i IGF-I. Mol. Qelizë. Biochem., 331 (1-2), 193-199 (2009)[PubMed]

  28. (Gjeni i orës) M. Sasaki, H. Yoshitane, NH. Du, T. Okano dhe Y. Fukada, Frenimi preferencial i aktivitetit BMAL2-CLOCK nga PER2 rithekson rolin e tij negativ dhe një rol pozitiv të BMAL2 në transkriptimin cirkadian. J. Biol. Chem., 284 (37), 25149-25159 (2009)[PubMed]

  29. (Glykogenesis, Clock gene) R. Doi, K. Oishi dhe N. Ishida, CLOCK rregullon ritmet cirkadiane të sintezës së glikogjenit hepatik nëpërmjet aktivizimit transkriptues të Gys2. J. Biol. Chem., 285 (29), 22114-22121 (2010)[PubMed]

  30. (Apoptoza, gjen i orës) K. Yoshida, P. He, N. Yamauchi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Rregullimi i lart i gjenit të orës cirkadiane Periudha 2 në qelizat mezenkimale të prostatës gjatë apoptozës së induktuar nga flutamidi. Mol. Qelizë. Biochem., 335 (1-2), 37-45 (2010)[PubMed]

  31. (Gjeni i orës) Y. Lee, J. Lee, I. Kwon, Y. Nakajima, Y. Ohmiya, GH. Djali, KH. Lee dhe K. Kim, Koaktivizimi i kompleksit CLOCK-BMAL1 nga CBP ndërmjetëson rivendosjen e orës cirkadiane. J. Cell Sci., 123(20), 3547-3557 (2010)[PubMed]

  32. (Gjeni i orës) T. Hirota, N. Kon, T. Itagaki, N. Hoshina, T. Okano, Y. Fukada, Represori transkriptues TIEG1 rregullon gjenin Bmal1 përmes kutisë GC dhe kontrollon orarin cirkadian. Genes Cells., 15 (2), 111-121 (2010)[PubMed]

  33. (Monitorimi i cAMP) M. Takeuchi, Y. Nagaoka, T. Yamada, H. Takakura dhe T. Ozawa, Treguesit ratiometrikë të biolumineshencës për monitorimin e adenozinës 3',5'-monofosfat ciklik në qelizat e gjalla bazuar në komplementimin e fragmentit të luciferazës. anale. Chem., 82 (22), 9306-9313 (2010)[PubMed]

  34. (DDS, transfeksioni i gjenit) K. Miyata, N. Gouda, H. Takemoto, M. Oba, Y. Lee, H. Koyama, Y. Yamasaki, K. Itaka, N. Nishiyama, K. Kataoka, Transfeksioni i zgjeruar me silicë -poliplekset e veshura që ngarkojnë ADN-në plazmide. Biomaterialet, 31(17), 4764-4770 (2010)[PubMed]

  35. (Terapia gjenetike) M. Oba, Y. Vachutinsky, K. Miyata, MR Kano, S. Ikeda, N. Nishiyama, K. Itaka, K. Miyazono, H. Koyama dhe K. Kataoka, Terapia gjenetike antiangiogjene e tumorit solid nga injeksion sistemik i micelave polipleks që ngarkojnë ADN-në plazmide që kodon flt-1 të tretshëm. Mol. Pharm., 7 (2), 501-509 (2010)[PubMed]

  36. (Luciferaza me ngjyra të dyfishta, gjen i orës) T. Noguchi, T. Michihata, W. Nakamura, T. Takumi, R. Shimizu, M. Yamamoto, M. Ikeda, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, miu luciferazë me dy ngjyra direkt demonstron shprehje të çiftëzuar të dy gjeneve të orës. Biochemistry, 49(37), 8053-8061 (2010)[PubMed]

  37. (Gjeni i orës) Y. Onishi, qelizat HSG, një model në orën submandibulare. Biosci. Rep., 31(1), 57-62 (2011)[PubMed]

  38. (Përgjigja ndaj stresit, proteina e goditjes nga nxehtësia) J. Sun, CS Conn, Y. Han, V. Yeung dhe SB. Qian, PI3K-mTORC1 zbut përgjigjen ndaj stresit duke penguar përkthimin Hsp70 të pavarur nga kapaku. J. Biol. Chem., 286 (8), 6791-6800 (2011)[PubMed]

  39. (Gjeni i orës) M. Uchikawa, M. Kawamura, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Rregullimi i poshtëm i gjenit të orës cirkadiane Periudha 2 në qelizat stromale endometriale të mitrës te minjtë shtatzënë gjatë decidualizimit. Chronobiol. Int., 28(1), 1-9 (2011)[PubMed]

  40. (Apoptoza, Diferencimi, Gjeni i orës) G. Chu, K. Yoshida, S. Narahara, M. Uchikawa, M. Kawamura, N. Yamauchi, Y. Xi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Ndryshimet e orët cirkadiane gjatë diferencimit dhe apoptozës së qelizave vezore të miut. Chronobiol. Int., 28(6), 477-487 (2011)[PubMed]

  41. (Alergji, gjen i orës) Y. Nakamura, D. Harama, N. Shimokawa, M. Hara, R. Suzuki, Y. Tahara, K. Ishimaru, R. Katoh, K. Okumura, H. Ogawa, S. Shibata dhe A. Nakao, Gjeni i orës cirkadiane Periudha2 rregullon një variacion të varur nga koha e ditës në reaksionin anafilaktik të lëkurës. J. Alergji Clin. Immunol., 127 (4), 1038-1045 (2011)[PubMed]

  42. (Metabolizmi, gjen i orës) H. Oike, K. Nagai, T. Fukushima, N. Ishida dhe M. Kobori, Feeding cues and injected nutrients induce shprehje akute e gjeneve të shumta të orës në mëlçinë e miut. PLoS One, 6(8), e23709 (2011)[PubMed]

  43. (Ushqimi, gjen i orës) H. Oike, M. Kobori, T. Suzuki dhe N. Ishida, Kafeina zgjat ritmet cirkadiane te minjtë. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 410 (3), 654-658 (2011)[PubMed]

  44. (Screening toksikologjik) M. Yasunaga, N. Oumi, M. Osaki, Y. Kazuki, T. Nakanishi, M. Oshimura dhe K. Sato, Krijimi dhe karakterizimi i një modeli të miut transgjenik për imazhin in vivo të shprehjes bmp4 në pankreas . PLoS One, 6(9), e24956 (2011)[PubMed]

  45. (siRNA, DDS)RJ. Christie, K. Miyata, Y. Matsumoto, T. Nomoto, D. Menasco, TC Lai, M. Pennisi, K. Osada, S. Fukushima, N. Nishiyama, Y. Yamasaki dhe K. Kataoka, Efekti i strukturës së polimerit në micelat e formuara midis siRNA dhe kopolimerit bllok kationik që përfshin tiolet dhe amidinat. Biomacromolecules, 12 (9), 3174-3185 (2011)[PubMed]

  46. (gjeni i orës) T. Tamaru, M. Hattori, K. Honda, I. Benjamin, T. Ozawa dhe K. Takamatsu, Sinkronizimi i ritmeve cirkadiane Per2 dhe ndërveprimi HSF1-BMAL1: CLOCK në fibroblastet e miut pas pulsit të goditjes termike afatshkurtër . PLoS One, 6(9), e24521 (2011)[PubMed]

  47. (Gjeni i orës) DY. Kim, E. Kwak, SH. Kim, KH. Lee, KC. Woo dhe KT. Kim, hnRNP Q ndërmjetëson një zbërthim të mRNA të lidhur nga përkthimi i varur nga faza e Periudhës 3 të miut. Nucleic Acids Res., 39(20), 8901-8914 (2011)[PubMed]

  48. (Fotoreceptor) D. Kojima, S. Mori, M. Torii, A. Wada, R. Morishita dhe Y. Fukada, proteina e fotoreceptorit OPN5 e ndjeshme ndaj UV tek njerëzit dhe minjtë. PLoS One, 6(10), e26388 (2011)[PubMed]

  49. (Maturimi i qelizave, gjen i orës) G. Chu, I. Misawa, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Kontributi i FSH dhe triiodothyronine në zhvillimin e orëve cirkadiane gjatë maturimit të qelizave granulosa . Jam. J. Physiol. Endokrinol. Metab., Epub (2011)[PubMed]

  50. (Gjeni i orës) Y. Onishi, K. Oishi, Y. Kawano dhe Y. Yamazaki, Harmala alkaloid harmonia është një modulator i transkriptimit cirkadian Bmal1. Biosci. Rep., 32(1), 45-52 (2012)[PubMed]

  51. (Gjeni i orës) S. Nishide, D. Ono, Y. Yamada, S. Honma dhe K. Honma, De novosynthesis of PERIOD fillon lëkundjen cirkadiane në bërthamën suprakiazmatike të miut të kultivuar pas frenimit të zgjatur të sintezës së proteinave nga cikloheksimidi. euro. J. Neurosci., 35 (2), 291-299 (2012)[PubMed]

  52. (Apoptoza) M. Ozaki, S. Haga dhe T. Ozawa, Monitorimi In Vivo i Dëmtimit të Mëlçisë duke përdorur sondë Caspase-3. Theranostics, 2 (2), 207-214 (2012)[PubMed]

  53. (Kondrogjeneza, oscilimet ATP) HJ. Kwon, Y. Ohmiya, K. Honma, S. Honma, T. Nagai, K. Saito dhe K. Yasuda, Lëkundjet e sinkronizuara ATP kanë një rol kritik në kondensimin parakondrogjenik gjatë kondrogjenezës. Cell Death Dis, 3, e278 (2012)[PubMed]

  54. (gjeni i orës) H. Chen, G. Chu, L. Zhao, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Rev-erbα rregullon ritmet cirkadiane dhe shprehjen e STAR në qelizat granuloza të miut siç identifikohet nga agonisti GSK4112. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 420 (2), 374-379 (2012)[PubMed]

  55. (Luciferaza me dy ngjyra, gjen i orës) T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Një sistem i analizës së luciferazës me dy ngjyra zbulon rivendosjen cirkadiane të fibroblasteve të kultivuara nga gjëndrat mbiveshkore të bashkëkulturuara. PLoS One, 7(5), e37093 (2012)[PubMed]

  56. (siRNA, DDS) RJ. Christie, Y. Matsumoto, K. Miyata, T. Nomoto, S. Fukushima, K. Osada, J. Halnaut, F. Pittella, HJ. Kim, N. Nishiyama dhe K. Kataoka, Micelat polimerike të synuara për trajtimin e siRNA të kancerit eksperimental me injeksion intravenoz. ACS Nano, Epub (2012)[PubMed]

  57. (Gjeni i orës) H. Yoshitane, S. Honma, K. Imamura, H. Nakajima, S. Nishide, D. Ono, H. Kiyota, N. Shinozaki, H. Matsuki, N. Wada, H. Doi, T. Hamada, K. Honma dhe Y. Fukada, JNK rregullon përgjigjen fotike të orës cirkadiane të gjitarëve. Rep. EMBO, 13(5), 455-461 (2012)[PubMed]

  58. (gjeni i orës) Y. Uchida, T. Osaki, T. Yamasaki, T. Shimomura, S. Hata, K. Horikawa, S. Shibata, T. Todo, J. Hirayama dhe H. Nishina, Përfshirja e Stress Kinase Mitogen- aktivizuar Protein Kinase Kinase 7 në rregullimin e orës cirkadiane të gjitarëve. J. Biol. Chem., 287 (11), 8318-26 (2012)[PubMed]

  59. (ATP, Ca2+, Kondrogjeneza) HJ. Kwon, Y. Ohmiya dhe K. Yasuda, Sistemi me dy ngjyra për monitorimin e njëkohshëm të dinamikës ndërqelizore Ca2+ dhe ATP. anale. Biochem., 430 (1), 45-47 (2012)[PubMed]

  60. (Gjeni i orës) Y. Onishi dhe Y. Kawano, Lidhja ritmike e Topoizomerazës I ndikon në transkriptimin e Bmal1 dhe periudhës cirkadiane. Nucleic Acids Res., 40(19), 9482-92 (2012)[PubMed]

  61. (ATP, TGF-β, Kondrogjeneza) HJ. Kwon, TGF-β, por jo sinjalizimi BMP indukton kondensimin prekondrogjenik përmes lëkundjeve të ATP gjatë kondrogjenezës. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 424 (4), 793-800 (2012)[PubMed]

  62. (Kondrogjeneza, oscilimet ATP) HJ. Kwon, sinjalizimi jashtëqelizor ATP nëpërmjet receptorit P2X4 dhe sinjalizimit cAMP/PKA ndërmjetëson lëkundjet ATP thelbësore për kondensimin parakondrogjen. J. Endocrinol., 214 (3), 337-48 (2012)[PubMed]

  63. (siRNA, DDS) N. Gouda, K. Miyata, RJ. Christie, T. Suma, A. Kishimura, S. Fukushima, T. Nomoto, X. Liu, N. Nishiyama dhe K. Kataoka, Nanogelimi me silicë i poliplekseve të PEGyluara që i përgjigjen mjedisit për stabilitet të zgjeruar dhe shpërndarjen ndërqelizore të siRNA. Biomaterialet, 34(2), 562-570 (2013)[PubMed]

  64. (DDS, transfeksioni i gjenit) S. Mochizuki, N. Kanegaea, K. Nishina, Y. Kamikawa, K. Koiwai, H. Masunaga dhe K. Sakurai, Roli i lipidit ndihmës dioleoilfosfatidiletanolamine (DOPE) për transfeksionin e ADN-së që bashkëpunon me një etilendiamine me lipide kationike. Biokimi. Biofiza. Acta., 1828 (2), 412-418 (2012)[PubMed]

  65. (Apoptoza, sonda biolumineshente) M. Ozaki, S. Haga, T. Ozawa, In Vivo Monitorimi i dëmtimit të mëlçisë duke përdorur sondë Caspase-3. Theranostics, 2 (2), 207-14 (2012)[PubMed]

  66. (mTOR, sinjalizimi i lëndëve ushqyese) CS. Conn dhe SB. Qian, Sinjalizimi i lëndëve ushqyese në homeostazën e proteinave: Një rritje në sasi në kurriz të cilësisë. Shkencë. Sinjali, 6(271), ra24 (2013)[PubMed]

  67. (Gjeni i orës) S. Cheon, N. Park, S. Cho dhe K. Kim, Periudha2induksioni i ndërmjetësuar nga glukokortikoidet vonon fazën e ritmit cirkadian. Acid Nukleik Res., 41 (12), 6161-74 (2013)[PubMed]

  68. (Gjeni i orës) H. Chen, L. Zhao, M. Kumazawa, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Downregulation of the core clock gene Bmal1 zbut shprehjen e gjeneve të lidhura me biosintezën e progesteronit dhe prostaglandinës në miu qelizat granuloze luteinizuese. Jam. J. Physiol. Cell Physiol., 304(12), C1131-40 (2013)[PubMed]

  69. (gjeni i orës) H. Chen, L. Zhao, G. Chu, G. Kito, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, FSH nxit zhvillimin e orës cirkadiane në qelizat granulosa të minjve nëpërmjet një hendeku Rruga e varur nga proteina e kryqëzimit Cx43. Jam. J. Physiol. Endokrinol. Metab., 304(6), E566-75 (2013)[PubMed]

  70. (Gjeni i orës) H. Tasaki, L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Profilizimi i gjeneve cirkadiane të shprehura në qelizat stromale endometriale të mitrës së minjve shtatzënë siç zbulohet nga mikrovargu i ADN-së i shoqëruar me interferencën e ARN-së. Front Endocrinol., 4, 82 (2013)[PubMed]

  71. (Gjeni i orës) F. Yang, I. Inoue, M. Kumagai, S. Takahashi, Y. Nakajima dhe M. Ikeda, Analiza në kohë reale e lëkundjes cirkadiane të promovuesit Rev-Erbβ. J. Atheroscler. Thromb., 20(3), 267-76 (2013)[PubMed]

  72. (Gjeni i orës) R. Satou, N. Sugihara, Y. Ishizuka, T. Matsukubo dhe Y. Onishi, metilimi i ADN-së i promotorit BMAL1. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 440 (3), 449-53 (2013)[PubMed]

  73. (Sonda biolumineshente, transduksion i sinjalit) L. Yang, Y. Nasu, M. Hattori, H. Yoshimura, A. Kanno dhe T. Ozawa, Sondat biolumineshente për të analizuar prodhimin e fosfatidilinositol 3,4,5-trisfosfatit të shkaktuar nga ligandi me Luciferin e ndarë Plotësimi. anale. Chem., 85 (23), 11352-9 (2013)[PubMed]

  74. (Sonda biolumineshente, acidifikimi brendaqelizor) M. Hattori, S. Haga, H. Takakura, M. Ozaki dhe T. Ozawa, Regjistrimi i saktë i qëndrueshëm i acidifikimit ndërqelizor në indet e gjalla me një proteinë biolumineshente të kontrollueshme nga foto. Proc. Natl. Akad. Shkencë. USA., 110(23), 9332-7 (2013)[PubMed]

  75. (Gjeni i orës) A. Hirano, K. Yumimoto, R. Tsunematsu, M. Matsumoto, M. Oyama, H. Kozuka-Hata, T. Nakagawa, D. Lanjakornsiripan, KI. Nakayama dhe Y. Fukada, FBXL21 Rregullon Lëkundjen e Orës Circadian përmes Ubiquitinimit dhe Stabilizimit të Kriptokromeve. Cell, 152(5), 1106-18 (2013)[PubMed]

  76. (Proteoliza, siRNA) Y. Tsuchiya, H. Taniguchi, Y. Ito, T. Morita, MR. Karim, N. Ohtake, K. Fukagai, T. Ito, S. Okamuro, S. Iemura, T. Natsume, E. Nishida dhe A. Kobayashi, Boshti i Casein Kinase 2-Nrf1 kontrollon pastrimin e proteinave të ubiquitinuara duke rregulluar proteazomin Shprehja e gjeneve. Mol. Cell Biol., 33(17), 3461-72 (2013)[PubMed]

  77. (Kondrogjeneza, oscilimet ATP) HJ. Kwon dhe Y. Ohmiya, Analiza metabolike e ndryshimeve diferenciale në metabolitët gjatë lëkundjeve të ATP në kondrogjenezë. Biomed. Res. Int., Epub 213972 (2013)[PubMed]

  78. (Kondrogjeneza, oscilimet ATP) HJ. Lëkundjet Kwon, ATP ndërmjetësojnë veprimin induktiv të sinjalizimit FGF dhe Shh në kondensimin parakondrogjenik. Biokimi i qelizave. Funksioni., 31(1), 75-81 (2013)[PubMed]

  79. (Kondrogjeneza, ATP, Oksigjen) HJ. Kwon, Y. Ohmiya dhe K. Yasuda, Monitorimi i njëkohshëm i niveleve të ATP ndërqelizore dhe oksigjenit në diferencimin kondrogjenik duke përdorur një raportues të biolumineshencës me dy ngjyra. Luminescence, Epub 22 tetor (2013)[PubMed]

  80. (Gjeni i orës) A. Natsubori, K. Honma dhe S. Honma, Përgjigjet diferenciale të ritmeve të shprehjes cirkadiane Per2 në zona diskrete të trurit ndaj injektimit të përditshëm të metamfetaminës dhe ushqimit të kufizuar te minjtë. euro. J. Neurosci., 37, 251-8 (2013)[PubMed]

  81. (Gjeni i orës) D. Ono, S. Honma dhe K. Honma, Kriptokromet janë kritike për zhvillimin e ritmeve koherente cirkadiane në bërthamën suprakiazmatike të miut. Nat. Komuni., 4, 1666 (2013)[PubMed]

  82. (gjeni i orës) JY. Jo, DH. Han, MH. Kim, IG. Ko, SE. Kim, N. Park, HK. Choe, KH. Kim, K. Kim, CJ. Kim dhe S. Cho, Prania e oshilatorëve të shumtë periferikë cirkadian në indet që kontrollojnë funksionin e zbrazjes tek minjtë. Exp. Mol. Med., 46, e81 (2014)[PubMed]

  83. (Gjeni i orës) S. Nishide, K. Hashimoto, T. Nishio, K. Honma, S. Honma, Zhvillimi specifik i organeve karakterizon shprehjen Per2 të gjenit të orës cirkadiane te minjtë. Jam. J. Physiol. Rregullore. Integrimi. Komp. Physiol., 306 (1), R67-74 (2014)[PubMed]

  84. (gjeni i orës) NC. Gossan, F. Zhang, B. Guo, D. Jin, H. Yoshitane, A. Yao, N. Glossop, YQ. Zhang, Y. Fukada dhe QJ. Meng, E3 ubiquitin ligaza UBE3A është një komponent integral i orës qarkore molekulare përmes rregullimit të faktorit të transkriptimit BMAL1. Nucleic Acids Res., 42 (9), 5765-75 (2014)[PubMed]

  85. (Gjeni i orës) A. Natsubori, K. Honma dhe S. Honma, Rregullimi i dyfishtë i gjenit të orës Per2shprehja në zona diskrete të trurit nga stimuluesi cirkadian dhe oshilatori i induktuar nga metamfetamina tek minjtë. euro. J. Neurosci., 39 (2), 229-40 (2014)[PubMed]

  86. (DDS) H. Tanaka, H. Akita, R. Ishiba, K. Tange, M. Arai, K. Kubo dhe H. Harashima, Nanogrimca neutrale e biodegradueshme e llojit të mbështjelljes së lipideve duke përdorur vitaminën A-Skela për shënjestrimin bërthamor të ADN-së plazmidike . Biomaterialet, 35(5), 1755-61 (2014)[PubMed]

  87. (DDS, siRNA) S. Murayama, P. Kos, K. Miyata, K Kataoka, E. Wagner dhe M. Kato, Rregullimi i gjeneve me anë të shpërndarjes brendaqelizore dhe fotodegradimi i nanogrimcave që përmbajnë ARN të vogla ndërhyrëse. Macromol. Biosci., 14 (5), 626-31 (2014)[PubMed]

  88. (Gjeni i orës) Y. Ogawa, Y. Kawano, Y. Yamazaki dhe Y. Onishi, Shikonin shkurton periudhën cirkadiane: Përfshirja e mundshme e frenimit të Top2. Biokimik. Biofiza. Res. Komuniteti, 443 (1), 339-43 (2014)[PubMed]

  89. (DDS, siRNA) HJ. Kim, K. Miyata, T. Nomoto, M. Zheng, A. Kim, X. Liu, H. Cabral, RJ. Christie, N. Nishiyama dhe K. Kataoka, shpërndarja e siRNA nga micelat kopolimere triblloqe me ndarje të renditura hapësinore të guaskës PEG, shtresë të ndërmjetme të ngarkuar me siRNA dhe bërthamë hidrofobike. Biomaterialet, 35(15), 4548-56 (2014)[PubMed]

  90. (Gjeni i orës) SK. Chun, J. Jang, S. Chung, H. Yun, NJ. Kim, JW. Jung, GH. Djali, YG. Suh dhe K. Kim, Identifikimi dhe Vërtetimi i Inhibitorëve të Kriptokromit që Modulojnë Orën Cirkadiane Molekulare. ACS Kimi. Biol., 9(3), 703-10 (2014)[PubMed]

  91. (DDS, Kanceri) GX. Zhao, H. Tanaka, CW. Kim, K. Li, D. Funamoto, T. Nobori, Y. Nakamura, T. Niidome, A. Kishimura, T. Mori dhe Y. Katayama, Vektorë të histidiniluar me bazë poli-L-lizine për shprehjen e gjeneve specifike për kancerin nëpërmjet duke rritur arratisjen endosomale. J. Biomater. Shkencë. Polim. Ed., 25 (5), 519-34 (2014)[PubMed]

  92. (gjeni i orës) SR. Moore, J. Pruszka, J. Vallance, E. Aihara, T. Matsuura, MH. Montrose, NF. Shroyer dhe CI. Hong, ritme të forta cirkadiane në kulturat organoide nga zorra e hollë e miut PERIOD2::LUCIFERASE. Dis. Modelet Mech., 7 (9), 1123-30 (2014)[PubMed]

  93. (DDS, siRNA) Y. Oe, RJ. Christie, M. Naito, SA. Low, S. Fukushima, K. Toh, Y. Miura, Y. Matsumoto, N. Nishiyama, K. Miyata dhe K. Kataoka, Micelat e kompleksit poliion të synuar aktivisht të stabilizuara nga ndërlidhja e kolesterolit dhe disulfidit për shpërndarjen sistematike të siRNA në tumoret e ngurta. Biomaterialet, 35(27), 7887-95 (2014)[PubMed]

  94. (Gjeni i orës) SK. Chun, J. Jang, S. Chung, H. Yun, NJ. Kim, JW. Jung, GH. Djali, YG. Suh dhe K. Kim, Identifikimi dhe Vërtetimi i Inhibitorëve të Kriptokromit që Modulojnë Orën Cirkadiane Molekulare. ACS Kimi. Biol., 9(3), 703-10 (2014)[PubMed]

  95. (Kondrogjeneza, oscilimet ATP) HJ. Kwon, S. Kurono, Y. Kaneko, Y. Ohmiya dhe K. Yasuda, Analiza e proteinave që tregojnë ndryshime diferenciale gjatë lëkundjeve të ATP në kondrogjenezë. Biokimi i qelizave. Funksioni., 32(5), 429-37 (2014)[PubMed]

  96. (Gjeni i orës, Alergjia) Y. Nakamura, N. Nakano, K. Ishimaru, M. Hara, T. Ikegami, Y. Tahara, R. Katoh, H. Ogawa, K. Okumura, S. Shibata, C. Nishiyama dhe A. Nakao, Rregullimi cirkadian i reaksioneve alergjike nga ora e qelizave mast tek minjtë. J. Alergji Clin. Immunol., 133 (2), 568-75 (2014)[PubMed]

  97. (Gjeni i orës) M. Kawamura, H. Tasaki, I. Misawa, G. Chu, N. Yamauchi dhe M. Hattori, Kontributi i testosteronit në sistemin e orës në qelizat mezenkime të prostatës së miut. Andrology, 2 (2), 225-33 (2014)[PubMed]

  98. (gjeni i orës) N. Kon, T. Yoshikawa, S. Honma, Y. Yamagata, H. Yoshitane, K. Shimizu, Y. Sugiyama, C. Hara, I. Kameshita, K. Honma dhe Y. Fukada, CaMKII është thelbësore për orën qelizore dhe bashkimin mes ritmeve të sjelljes në mëngjes dhe në mbrëmje. Genes Dev., 28, 1101-1110, (2014)[PubMed]

  99. (Gjeni i orës) K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi dhe M. Hattori, REV-ERBα Frenon shprehjen PTGS2 në qelizat stromale dhe epiteliale të endometriumit të mitrës së gjedhit të ekspozuara ndaj steroideve ovarian. J. Reprod. Dev., 60(5), 362-370 (2014)[PubMed]

  100. (Kalciumi ndërqelizor) S. Suzuki, K. Murotomi, Y. Nakajima, K. Kawai, K. Ohta, K. Warita, T. Miki dhe Y. Takeuchi, Zhvillimi i një faktori transkriptimi artificial të varur nga kalciumi për të zbuluar kalciumin e qëndrueshëm ndërqelizor Lartësia. ACS Synth. Biol., 3(10), 717-722 (2014)[PubMed]

  101. (Zhvillimi) M. Matsuda, M. Koga, K. Woltjen, E. Nishida dhe M. Ebisuya, Inhibimi anësor sintetik rregullon bifurkacionin e tipit qelizor me raporte të forta. Nat. Komuni., 6, 6196 (2015)[PubMed]

  102. (Kondrogjeneza, ATP) HJ. Kwon dhe Y. Han, Monitorimi i dyfishtë i niveleve të sekretimit dhe ATP gjatë kondrogjenezës duke përdorur sistemin e monitorimit të kombinuar të kulturës së perfuzionit të biolumineshencës. Biomed. Res. Int., 219068 (2015)[PubMed]

  103. (Stresi) X. Gao, J. Wan, B. Liu, M. Ma, B. Shen dhe SB. Qian, Profili sasior i ribozomeve iniciuese in vivo. Nat. Metodat, 12 (2), 147-153 (2015)[PubMed]

  104. (Përgjigje ndaj goditjes nga nxehtësia) J. Zhou, J. Wan, X. Gao, X. Zhang, SR. Jaffrey dhe SB. Qian, metilimi dinamik m6A mRNA drejton kontrollin përkthimor të përgjigjes së goditjes së nxehtësisë. Natyra, 526(7574), 591-594 (2015)[PubMed]

  105. (Gjeni i orës) Y. Lee, SK. Chun dhe K. Kim, Sumoylation kontrollon rivendosjen e orës të ndërmjetësuar nga CLOCK-BMAL1 nëpërmjet rekrutimit të CBP në vatrat e transkriptimit bërthamor. Biokimi. Biofiza. Acta, 1853 (10), 2697-2708 (2015)[PubMed]

  106. (gjeni i orës) J. Koo, HK. Choe, HD. Kim, SK. Chun, GH. Son dhe K. Kim, Efekti i Mefloquine, një bllokues i kryqëzimit të hendekut, në lëkundjen e gjenit të periudhës cirkadiane 2 në bërthamën suprakiazmatike të miut Ex Vivo. Endokrinol. Metab., 30 (3), 361-370 (2015)[PubMed]

  107. (Sinteza e aldosteronit) D. Yarimizu, M. Doi, T. Ota dhe H. Okamura, Induksioni selektiv i stimulit i receptorit bërthamor jetim NGFIB nënvizon ndikimet e ndryshme të angiotenzinës II dhe kaliumit në zonën e gjëndrës mbiveshkore të njeriut, zona glomerulosaspecifike SD 3-H. shprehja në qelizat H295R adrenokortale. Endokr. J., 62 (9), 765-776 (2015)[PubMed]

  108. (Gjeni i orës) M. Nakajima, S. Koinuma dhe Y. Shigeyoshi, Reduktimi i shpejtësisë së përkthimit stabilizon ritmin cirkadian dhe zvogëlon madhësinë e zhvendosjes së fazës. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 464 (1), 354-359 (2015)[PubMed]

  109. (gjeni i orës) H. Tasaki, L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Roli frenues i REV-ERBα në shprehjen e gjenit të proteinave morfogjenetike të kockave familja në qelizat stromale të endometrit të mitrës së miut. Jam. J. Physiol. Cell Physiol., 308(7), C528-538 (2015)[PubMed]

  110. (gjeni i orës) K. Isayama, L. Zhao, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Largimi i frenimit të Rev-erbα kontribuon në shprehjen e prostaglandinës G/H sintaza 2 në miu qelizat stromale endometriale. Jam. J. Physiol. Endokrinol. Metab., 308(8), E650-661 (2015)[PubMed]

  111. (gjeni i orës) H. Chen, K. Isayama, M. Kumazawa, L. Zhao, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Integrimi i receptorit bërthamor REV-ERBα i lidhur me oshilatorët cirkadian në shprehjet e gjeneve Alas1, Ppargc1a dhe Il6 në qelizat granuloza të miut. Chronobiol. Int., 32(6), 739-749 (2015)[PubMed]

  112. (Karcinogjeneza) RS. Kalra, CT. Cheung, A. Chaudhary, J. Prakash, SC. Kaul dhe Renu Wadhwa, CARF (Bashkëpunëtor i ARF) mbishprehja në qelizat me mungesë p53 promovon kancerogjenezën. Mol. Oncol., 9 (9), 1877-1889 (2015)[PubMed]

  113. (Ndjeshmëria e lëkurës, IL-8) Y. Kimura, C. Fujimura, Y. Ito, T. Takahashi, Y. Nakajima, Y. Ohmiya dhe S. Aiba, Optimizimi i analizës së IL-8 Luc si një test in vitro për sensibilizimi i lëkurës. Toksikol. In Vitro, 29 (7), 1816-1830 (2015)[PubMed]

  114. (Luciferaza) M. Yasunaga, K. Murotomi, H. Abe, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Ohbayashi, M. Oshimura, T. Noguchi, K. Niwa, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Luciferaza shumë e ndjeshme analiza e reporterit duke përdorur një sekuencë të fuqishme destabilizimi të kalpainës 3. J. Biotechnol., 194, 115-123 (2015)[PubMed]

  115. (Gjeni i orës) N. Kon, Y. Sugiyama, H. Yoshitane, I. Kameshita dhe Y. Fukada, Ekzaminimi i inhibitorëve me bazë qelizore identifikon kinaza të shumta proteinike të rëndësishme për lëkundjet e orës cirkadiane. Komuna. Integrimi. Biol., 8(4), e982405 (2015)[PubMed]

  116. (Gjeni i orës) T. Tamaru, M. Hattori, K. Honda, Y. Nakahata, P. Sassone-Corsi, GTJ. van der Horst, T. Ozawa dhe K. Takamatsu, CRY nxit fosforilimin ciklik BMAL1 të ndërmjetësuar nga CK2 për të kontrolluar orën cirkadiane të gjitarëve. PLoS Biol., 13(11), e1002293 (2015)[PubMed]

  117. (gjeni i orës) T. Yoshikawa, Y. Nakajima, Y. Yamada, R. Enoki, K. Watanabe, M. Yamazaki, K. Sakimura, S. Honma dhe K. Honma, Profilet hapësinore të transkriptimit të vazopresinës së argininës në bërthamën suprakiazmatike të kultivuar . euro. J. Neurosci., 42 (9), 2678-2689 (2015)[PubMed]

  118. (Gjeni i orës) M. Mieda, D. Ono, E. Hasegawa, H. Okamoto, K. Honma, S. Honma dhe T. Sakurai, Orët qelizore në neuronet AVP të SCN janë kritike për çiftimin ndërneuronal që rregullon ritmin e sjelljes cirkadiane. Neuron, 85 (5), 1103-1116 (2015)[PubMed]

  119. (gjeni i orës) M. Doi, I. Murai, S. Kunisue, G. Setsu, N. Uchio, R. Tanaka, S. Kobayashi, H. Shimatani, H. Hayashi, HW. Chao, Y. Nakagawa, Y. Takahashi, Y. Hotta, J. Yasunaga, M. Matsuoka, MH. Hastings, H. Kiyonari dhe H. Okamura, Gpr176 është një receptor jetim Gz i lidhur me proteinën G që përcakton ritmin e sjelljes cirkadiane. Nat. Komuni., 7, 10583 (2016)[PubMed]

  120. (gjeni i orës) L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto dhe M. Hattori, Receptori bërthamor REV-ERBa shtyp transkriptimin e gjeneve të faktorit të rritjes/diferencimit 10 dhe 15 në qelizat stromale të endometrit të miut. Fiziol. Rep., 4(2), e12663 (2016)[PubMed]

  121. (Gjeni i orës) UNË. Goya, A. Romanowski, CS. Caldart, CY. Bénard dhe DA. Golombek, ritmet cirkadiane të identifikuara në Caenorhabditis elegans nga monitorimi afatgjatë in vivo i një reporteri biolumineshent. Proc. Natl. Akad. Shkencë. USA, 113(48), E7837-7845 (2016)[PubMed]

  122. (Gjeni i orës, Cikli qelizor) T. Matsu-ura, A. Dovzhenok, E. Aihara, J. Rood, H. Le, Y. Ren, AE. Rosselot, T. Zhang, C. Lee, K. Obrietan, MH. Montrose, S. Lim dhe SR. Moore, Lidhja ndërqelizore e ciklit qelizor dhe ora cirkadiane në kulturën e qelizave staminale të të rriturve. Mol. Cell, 64(5), 900-912 (2016)[PubMed]

  123. (gjeni i orës) A. Hirano, T. Nakagawa, H. Yoshitane, M. Oyama, H. Kozuka-Hata, D. Lanjakornsiripan dhe Y. Fukada, USP7 dhe TDP-43: Rregullimi Pleiotropic i Stabilitetit të Proteinave Kriptokrome Shpejtë Lëkundjen e Ora cirkadiane e gjitarëve. PLoS One, 11(4), e0154263 (2016)[PubMed]

  124. (Gjeni i orës) K. Shimizu, Y. Kobayashi, E. Nakatsuji, M. Yamazaki, S. Shimba, K. Sakimura dhe Y. Fukada, SCOP/PHLPP1b ndërmjetëson rregullimin cirkadian të kujtesës së njohjes afatgjatë. Nat. Komuna, 7, 12926 (2016)[PubMed]

  125. (Gjeni i orës) T. Yoshikawa dhe S. Honma, Litiumi zgjat periudhën cirkadiane të fetave të kultivuara të trurit në një mënyrë specifike të zonës. Sjellja. Brain Res., 314, 30-37 (2016)[PubMed]

  126. (Gjeni i orës) D. Ono, S. Honma dhe K. Honma, Rolet diferenciale të sinjalizimit AVP dhe VIP në ndryshimet pas lindjes së rrjeteve nervore për ritmet koherente cirkadiane në SCN. Shkencë. Adv., 2(9), e1600960 (2016)[PubMed]

  127. (Gjeni i orës) Y. Nakamura, K. Ishimaru, S. Shibata dhe A. Nakao, Rregullimi i niveleve të histaminës plazmatike nga ora e qelizave mast dhe modulimi i saj nga stresi. Shkencë. Rep., 7, 39934 (2017)[PubMed]

  128. (Faktori i transkriptimit) M. Futami, T. Nakano, M. Yasunaga, M. Makihara, T. Asama, Y. Hagihara, Y. Nakajima dhe J. Futami, Rritja e palosjes në qelizë të faktorit të transkriptimit të kationizuar në mënyrë të kthyeshme duke përdorur peptid amfipatik. J. Biosci. Bioeng., 123(4), 419-424 (2017)[PubMed]

  129. (Gjeni i orës) M. Mieda, E. Hasegawa, N. Kessaris dhe T. Sakurai, Ritmet cirkadiane të rregullimit të imët: Rëndësia e shprehjes Bmal1 në trurin e përparmë ventral. Përpara. Neurosci., 11, 55 (2017)[PubMed]

  130. (Gjeni i orës) N. Park, JE. Song, S. Jeong, TT. Tran, HW. Ko, EY. Kim, kinaza 3 e lidhur me Vaccinia (VRK3) përcakton periudhën cirkadiane dhe amplituda duke ndikuar në lokalizimin nënqelizor të proteinave të orës në qelizat e gjitarëve. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 487 (2), 320-326 (2017)[PubMed]

  131. (gjeni i orës) T. Kawauchi, K. Ishimaru, Y. Nakamura, N. Nakano, M. Hara, H. Ogawa, K. Okumura, S. Shibata dhe A. Nakao, Rregullimi i përkohshëm i varur nga ora e IL-33/ Përgjigja e qelizave mast të ndërmjetësuara nga ST2. Alergol. Int., 66(3), 472-478 (2017)[PubMed]

  132. (gjeni i orës) R. Ikarashi, H. Akechi, Y. Kanda, A. Ahmad, K. Takeuchi, E. Morioka, T. Sugiyama, T. Ebisawa, M. Ikeda dhe M. Ikeda, Rregullimi i lëkundjeve të orës molekulare dhe Aktiviteti fagocitar nëpërmjet sinjalizimit muskarinik Ca2+ në qelizat epiteliale të pigmentit të retinës njerëzore. Shkencë. Rep., 7, 44175 (2017)[PubMed]

  133. (DDS, siRNA) M. Naito, R. Azuma, H. Takemoto, M. Hori, N. Yoshinaga, S. Osawa, R. Kamegawa, HJ. Kim, T. Ishii, N. Nishiyama, K. Miyata dhe K. Kataoka, Komplekse poliionesh me shumë shtresa me shtresë silicë të tretshme të mbuluara nga dendësia kontrolluese e zinxhirëve PEG të konjuguar me cRGD për shpërndarjen e siRNA-së të synuar nga kanceri. J. Biomater. Shkencë. Polim. Ed., 28(10-12), 1109-1123 (2017)[PubMed]

  134. (Gjeni i orës) D. Ono, S. Honma, Y. Nakajima, S. Kuroda, R. Enoki dhe K. Honma, Disociimi i ritmeve cirkadiane Per1 dhe Bmal1 në bërthamën suprakiazmatike paralelisht me rezultatet e sjelljes. Proc. Natl. Akad. Shkencë. USA, 114(18), E3699-E3708 (2017)[PubMed]

  135. (Gjeni i orës) T. Tomita, R. Kurita dhe Y. Onishi, Rregullimi epigjenetik i orës cirkadiane: roli i 5-aza-2'-deoksicitidinës. Biosci. Rep., 37(3), BSR20170053 (2017)[PubMed]

  136. (Citotoksiciteti) M. Yasunaga, Y. Fujita, R. Saito, M. Oshimura dhe Y. Nakajima, Monitorimi i vazhdueshëm afatgjatë i citotoksicitetit në sferoidet 3D të hepatociteve që shprehin luciferazën e brumbullit nga matja e biolumineshencës jodestruktive. BMC Bioteknol., 17(1), 54 (2017)[PubMed]

  137. (Gjeni i orës) G. Kurosawa, A. Fujioka, S. Koinuma, A. Mochizuki, Y. Shigeyoshi, Bashkim temperaturë-amplitudë për ritme të qëndrueshme biologjike në temperatura të ndryshme. Kompjuter PLoS. Biol., 13(6), e1005501 (2017)[PubMed]

  138. (Përkthimi mARN) RA. Coots, XM. Liu, Y. Mao, L. Dong, J. Zhou, J. Wan, X. Zhang dhe SB. Qian, m6A lehtëson përkthimin e mRNA të pavarur nga eIF4F. Mol. Cell, 68(3), 504-514 (2017)[PubMed]

  139. (gjeni i orës) N. Hayasaka, A. Hirano, Y. Miyoshi, IT. Tokuda, H. Yoshitane, J. Matsuda dhe Y. Fukada, Kinaza 3 e induktueshme nga kripa rregullon orën cirkadiane të gjitarëve duke destabilizuar proteinën PER2. eLife, 6, e24779 (2017)[PubMed]

  140. (Gjeni i orës) M. Sujino, T. Asakawa, M. Nagano, S. Koinuma, K. Masumoto dhe Y. Shigeyoshi, mutacioni CLOCKΔ19 modifikon mënyrën e sinkronizimit midis neuroneve të lëkundjes në bërthamën suprakiazmatike. Shkencë. Rep., 8 (1), 854 (2018)[PubMed]

  141. (Gjeni i orës) A. Sengiku, M. Ueda, J. Kono, T. Sano, N. Nishikawa, S Kunisue, K. Tsujihana, LS. Liou, A. Kanematsu dhe S. Shimba, M. Doi, H. Okamura, O. Ogawa dhe H. Negoro. Shkencë. Rep., 8 (1), 1996 (2018)[PubMed]

  142. (gjeni i orës) T. Ihara, T. Mitsui, Y. Nakamura, M. Kanda, S. Tsuchiya, S. Kira, H. Nakagomi, N. Sawada, Y. Hirayama, K. Shibata, E. Shigetomi, Y. Shinozaki, M. Yoshiyama, A. Nakao, M. Takeda dhe S. Koizumi, Shprehja cirkadiane e Piezo1, TRPV4, Connexin26 dhe VNUT, e lidhur me nivelet e shprehjes së gjeneve të orës në qelizat uroteliale të kultivuara primare të miut. Neurourol. Urodyn., 37(3), 942-951 (2018)[PubMed]

  143. (Gjeni i orës) J. Jang, S. Chung, Y. Choi, HY. Lim, Y. Son, SK. Chun, GH. Djali, K. Kim, YG. Kështu, JW. Jung, Frenuesi i kriptokromit KS15 rrit transkriptimin e ndërmjetësuar nga kutia elektronike duke ndërprerë veprimin e reagimit të një kompleksi transkriptim-represor cirkadian. Life Sci., 200, 49-55 (2018)[PubMed]

  144. (Gjeni i orës, stresi qelizor) K. Imamura, H. Yoshitane, K. Hattori, M. Yamaguchi, K. Yoshida, T. Okubo, I. Naguro, H. Ichijo dhe Y. Fukada, kinazat e familjes ASK ndërmjetësojnë stresin qelizor dhe sinjalizimi redoks në orën cirkadiane. Proc. Natl. Akad. Shkencë. SHBA, 115(14), 3646-3651 (2018)[PubMed]

  145. (Gjeni i orës) E. Morioka, Y. Kanda, H. Koizumi, T. Miyamoto dhe M. Ikeda, Histamina rregullon lëkundjet e orës molekulare në qelizat epiteliale të pigmentit të retinës njerëzore nëpërmjet receptorëve H1. Përpara. Endocrinol., 9, 108 (2018)[PubMed]

  146. (Nekroptoza, Hipoksia) S. Haga, A. Kanno, T. Ozawa, N. Morita, M. Asano dhe M. Ozaki, Zbulimi i nekroptozës në dëmtimin e hepatociteve të ndërmjetësuara nga ligand dhe hipoksi duke përdorur një zbulim të ri të sondës optike Lidhja e proteinave ndërvepruese të receptorit (RIP) 1/RIP3. Oncol. Res., 26 (3), 503-513 (2018)[PubMed]

  147. (DDS) H. Tanaka, T. Nakatani, T. Furihata, K. Tange, Y. Nakai, H. Yoshioka, H. Harashima dhe H. Akita, In vivo futja e mRNA e kapsuluar në nanogrimca lipide në qelizat neuronale të trurit dhe astrocitet nëpërmjet administrimit intracerebroventrikular. Mol. Pharm., 15 (5), 2060-2067 (2018)[PubMed]

  148. (Gjeni i orës, Rishikim) C. Ramanathan dhe AC. Liu, Zhvillimi i modeleve të orës celulare të gjitarëve duke përdorur reporterin e luciferazës së fishekzjarrëve. Metodat Mol. Biol., 1755, 49-64 (2018)[PubMed]

  149. (Myogenesis) Q. Li, H. Yoshimura, M. Komiya, K. Tajiri, M. Uesugi, Y. Hata dhe T. Ozawa, Një ekzaminim i fuqishëm i shkrirjes së qelizave me bazë të ndarjes së luciferazës për zbulimin e molekulave që nxisin miogjenezën. Analist, 143 (14), 3472-3480 (2018)[PubMed]

  150. (Gjeni i orës) S. Nishide, S. Honma dhe K. Honma, Dy lëkundje cirkadiane të shoqëruara rregullojnë shprehjen Bmal1-ELuc dhe Per2-SLR2 në bërthamën suprakiazmatike të miut. Shkencë. Rep., 8 (1), 14765 (2018)[PubMed]

  151. (Anti-inflamacion, IL-6, IL-10) P. Saiki, Y. Nakajima, LJLD. Van Griensven, K. Miyazaki, Monitorimi në kohë reale i shprehjes së raportuesit të IL-6 dhe IL-10 për aktivitetin anti-inflamator në qelizat e gjalla RAW 264.7. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 503 (3), 885-890 (2018)[PubMed]

  152. (Gjeni i orës, stresi UV) G. Kawamura, M. Hattori, K. Takamatsu, T. Tsukada, Y. Ninomiya, I. Benjamin, P. Sassone-Corsi, T. Ozawa dhe T. Tamaru, Ndërveprimi bashkëpunues midis BMAL1, HSF1 dhe p53 mbron qelizat e gjitarëve nga stresi UV. Komuna. Biol., 1, 204 (2018)[PubMed]

  153. (gjeni i orës) AR. Saran, D. Kalinowska, S. Oh, R. Janknecht, L. DiTacchio, JMJD5 lidhjet e funksionit CRY1 dhe degradimit proteazomal. PLoS Biol., 16(11), e2006145 (2018)[PubMed]

  154. (Gjeni i orës) J. Lee, E. Park, GH. Kim, I. Kwon dhe K. Kim, Një variant i bashkimit të Bmal1 të njeriut vepron si një rregullator negativ i orës qarkore molekulare. Exp. Mol. Med., 50(12), 159 (2018)[PudMed]

  155. (gjeni i orës) Y. Maruyama, Y. Asaoka, K. Nakahama, T. Tamaru, K. Takamatsu, N. Takamatsu, A. Hattori, S. Nishina, N. Azuma, A. Kawahara, K. Kume dhe H. Nishina, Komponentët e orës Period2, Cryptochrome1a dhe Cryptochrome2a funksionojnë në vendosjen e ritmeve të sjelljes të varura nga drita dhe/ose niveleve totale të aktivitetit te zebrafish. Shkencë. Rep., 9 (1), 196 (2019)[PubMed]

  156. (Gjeni i orës, stresi ER) L. Gao, H. Chen, C. Li, Y. Xiao, D. Yang, M. Zhang, D. Zhou, W. Liu, A. Wang dhe Y. Jin, aktivizimi i stresit ER dëmton shprehjen e orës cirkadiane dhe gjeneve të kontrolluara nga ora në qelizat NIH3T3 nëpërmjet një mekanizmi të varur nga ATF4. Qelizë. Signal., 57, 89-101 (2019)[PubMed]

​

LumiFL SpectroCapture (AB-1850)

  1. Y. Nakajima, K. Kobayashi, K. Yamagishi, T. Enomoto dhe Y. Ohmiya, Klonimi i cDNA dhe Karakterizimi i një Luciferaze të Sekretuar nga Ostracod ndritshëm japonez, Cypridina noctiluca. Biosci. Bioteknol. Biochem., 68 (3), 565-570 (2004)[PubMed]

  2. Y. Nakajima, T. Kimura, C. Suzuki dhe Y. Ohmiya, Përmirësimi i Shprehjes së Luciferazave të reja që lëshojnë të kuqe dhe jeshile të krimbave hekurudhor Phrixothrix në qelizat e gjitarëve. Biosci. Bioteknol. Biochem., 68 (4), 948-951 (2004)[PubMed]

  3. Y. Nakajima, M. Ikeda, T. Kimura, S. Honma, Y. Ohmiya dhe K. Honma, Roli i dyanshëm i receptorit bërthamor jetim RORα në transkriptimet e gjeneve të orës të demonstruara nga një sistem i ri i analizës së raportuesit. FEBS Lett., 565, 122-126 (2004)[PubMed]

  4. T. Otsuji, E. Okuda-Ashitaka, S. Kojima, H. Akiyama, S. Ito dhe Y. Ohmiya, Monitorimi për përpunimin biologjik dinamik nga sistemi intramolekular i transferimit të energjisë së rezonancës së biolumineshencës duke përdorur luciferazën e sekretuar.  Anal. Biochem., 329, 230-237 (2004)[PubMed]

  5. C. Suzuki, Y. Nakajima, H. Akimoto, C. Wu dhe Y. Ohmiya, Një enzimë e re raportuese shtesë, luciferaza dinoflagelate, për monitorimin e shprehjes së gjeneve në qelizat e gjitarëve. Gene, 344, 61-66 (2005)[PubMed]

  6. Y. Ohmiya, S. Kojima, M. Nakamura dhe H. Niwa, Bioluminescence në kërmillin e ngurtësuar, Latia neritoides. Dem. Kimik. Soc. Japoni, 78 (7), 1197-1205 (2005)[PubMed]

  7. Y. Nakajima, T. Kimura, K. Sugata, T. Enomoto, A. Asakawa, H. Kubota, M. Ikeda dhe Y. Ohmiya, Sistemi i analizës së luciferazës shumëngjyrësh: monitorimi me një hap i shprehjeve të shumta të gjeneve me një substrat sinjalizues. BioTechniques, 38(6), 891-894 (2005)[PubMed]

  8. M. Nakamura, M. Mamino, M. Masaki, S. Maki, R. Matsui, S. Kojima, T. Hirano, Y. Ohmiya dhe H. Niwa, Aktiviteti i biolumineshencës së analogëve të luciferinës Latia: zëvendësimi i 2,6, Unaza 6-trimetilcikloheksen mbi grupet fenil të zëvendësuar me metil. Tetrahedron Lett., 46 (1), 53-56 (2005)[Lidhje]

  9. H. Kondo, T. Igarashi, S. Maki, H. Niwa, H. Ikeda dhe T. Hirano, Efektet zëvendësuese në kinetikë për reaksionin e kimilumineshencës së 6-arylimidazo[1,2-a]pyrazin-3(7H) -one (analoge Cypridina luciferin): mbështetje për mekanizmin e transferimit të elektroneve të vetme (SET)-oksigjenimi me oksigjen molekular të trefishtë. Tetrahedron Lett., 46(45), 7701-7704 (2005)[Lidhje]

  10. K. Mori, S. Maki, H. Niwa, H. Ikeda dhe T. Hirano, Emitues i vërtetë i dritës në biolumineshencën e fotoproteinave të aktivizuara nga kalciumi aequorin dhe obelin: emetimi i dritës nga gjendja e ngacmuar e vetme e anionit fenolate koelenteramid në një çifti jonik i kontaktit. Tetrahedron, 62(26), 6272-6288 (2006)[Lidhje]

  11. T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Monitorimi i njëkohshëm i modeleve të shprehjes së pavarur të gjeneve në dy lloje të fibroblasteve të bashkëkulturuara me luciferazë të ndryshme që lëshojnë ngjyra. BMC Bioteknol., 8, 40 (2008)[PubMed]

  12. K. Teranishi dhe O. Shimomura, Biolumineshenca e organeve të dritës së krahut të kallamarit ndriçues Watasenia scintillans. Biochim Biophys Acta, 1780(5), 784-792 (2008)[PubMed]

  13. C. Suzuki-Ogoh, C. Wu dhe Y. Ohmiya, rajoni C-terminal i domenit aktiv rrit aktivitetin enzimatik në luciferazën dinoflagelate. Fotokimi. Fotobiol. Sci., 7 (2), 208-211 (2008)[PubMed]

  14. Y. Takenaka, H. Masuda, A. Yamaguchi, S. Nishikawa, Y. Shigeri, Y. Yoshida dhe H. Mizuno, Dy forma të luciferazave të sekretuara dhe të qëndrueshme nga krustacet e kopepodit detar, Metridia pacifica. Gene, 425 (1-2), 28-35 (2008)[PubMed]

  15. T. Hirano, Y. Takahashi, H. Kondo, S. Maki, S. Kojima, H. Ikeda dhe H. Niwa, Mekanizmi i reagimit për rendimentin e lartë kuantik të biolumineshencës Cypridina (Vargula) i mbështetur nga kimilumineshenca e 6-arilit -2-metilimidazo[1,2-a]pirazin-3(7H)-one (analoge Cypridina luciferin). Fotokimi. Fotobiol. Sci., 7 (2), 197-207 (2008)[PubMed]

  16. C. Wu, K. Mino, H. Akimoto, M. Kawabata, K. Nakamura, M. Ozaki dhe Y. Ohmiya, Imazhe in vivo me luminescencë të kuqe të largët të një biomarkeri të bazuar në BRET nga Cypridina bioluminescence në një ngjyrë organike. Proc. Natl. Akad. Shkencë. USA, 106(37), 15599-15603 (2009)[PubMed]

  17. T. Noguchi, T. Michihata, W. Nakamura, T. Takumi, R. Shimizu, M. Yamamoto, M. Ikeda, Y. Ohmiya dhe Y. Nakajima, Mouse Luciferase me dy ngjyra demonstron drejtpërdrejt shprehjen e çiftuar të dy gjeneve të orës. Biochemistry, 49(37), 8053-8061 (2010)[PubMed]

  18. Y. Nakajima, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Noguchi, H. Hoshino, K. Niwa, VR. Viviani, Y. Ohmiya, Luciferaza e Përmirësuar e Beetle për Imazhimin e Biolumineshencës me Rezolucion të Lartë. PLoS One, 5(4), e10011 (2010)[PubMed]

  19. R. Ogura, N. Matsuo dhe K. Hiratsuka, Spektrat e biolumineshencës së luciferazës së brumbullit të klikimit në qelizat e bimëve më të larta. Plant Bioteknol., 28 (4), 423-426 (2011)[Lidhje]

  20. C. Wu, K. Kawasaki, S. Ohgiya dhe Y. Ohmiya, Studime kimike mbi sistemin BRET midis biolumineshencës së Cypridina dhe pikave kuantike. Fotokimi. Fotobiol. Sci., 10 (10), 1531-1534 (2011)[PubMed]

  21. AKK. Kafi, M. Hattori, N. Misawa dhe T. Ozawa, Analiza e biolumineshencës me ngjyra të dyfishta për Monitorimin sasior të ndërveprimeve të receptorit të lidhur me proteinën G dhe β-arrestinës. Pharmaceuticals, 4(3), 457-469 (2011)[Lidhje]

  22. D. Kato, K. Yokoyama, Y. Hiraishi, M. Takeo dhe S. Negoro, Krahasimi i Aktiviteteve Sintetike të Acyl-CoA dhe Enantioselektive ndaj acideve 2-arilpropanoike në Luciferazat e Firefly. Biosci. Biotechnol Biochem., 75(9), 1758-1762 (2011)[PubMed]

  23. SB. Kim, Y. Ito dhe M. Torimura, Kapsula biolumineshente për imazhe me qeliza të gjalla. Biokonjug. Chem., 23 (11), 2221-2228 (2012)[PubMed]

  24. SB. Kim, M. Torimura dhe H. Tao, Krijimi i Luciferazave Artificiale për Bioassays. Biokonjug. Chem., 24 (12), 2067-2075 (2013)[PubMed]

  25. SB. Kim, T. Suzuki dhe A. Kimura, Një sistem i analizës biolumineshente për përcaktimin e hormoneve me qeliza të plota. Kimik. Farm. Bull., 61 (7), 706-713 (2013)[PubMed]

  26. Y. Takenaka, A. Noda-Ogura, T. Imanishi, A. Yamaguchi, T. Gojobori dhe Y. Shigeri, Analiza llogaritëse dhe shprehja funksionale e luciferazës kopepod stërgjyshore. Gene, 528 (2), 201-205 (2013)[PubMed]

  27. S. Iwano, R. Obata, C. Miura, M. Kiyama, K. Hama, M. Nakamura, Y. Amano, S. Kojima, T. Hirano, S. Maki dhe H. Niwa, Zhvillimi i analogëve të thjeshtë të luciferinës së fishekzjarreve që lëshon dritë biologjike të dritares blu, jeshile, të kuqe dhe afër infra të kuqe. Tetrahedron, 69(19), 3847-3856 (2013)[Lidhje]

  28. C. Miura, M. Kiyama, S. Iwano, K. Ito, R. Obata, T. Hirano, S. Maki dhe H. Niwa, Vetitë e sintezës dhe lumineshencës së analogëve të luciferinës së xixëllonjave të tipit bifenil me një të re, afër infra të kuqe bioluminofori që lëshon dritë. Tetrahedron, 69(46), 9726-9734 (2013)[Lidhje]

  29. M. Hattori, S. Haga, H. Takakura, M. Ozaki dhe T. Ozawa, Regjistrimi i saktë i qëndrueshëm i acidifikimit ndërqelizor në indet e gjalla me një proteinë biolumineshente të kontrollueshme nga foto. Proc. Natl. Akad. Shkencë. SHBA, 110(23), 9332-9337 (2013)[PubMed]

  30. D. Kato, T. Kubo, M. Maenaka, K. Niwa, Y. Ohmiya, M. Takeo dhe S. Negoro, Konfirmimi i faktorëve të përcaktimit të ngjyrës për derivatet Ser286 të luciferazës së xixëllonjave nga Luciola cruciata (LUC-G). J. Mol. katal. B Enzym., 87, 18-23 (2013)[Lidhje]

  31. SB. Kim dhe H. Izumi, Luciferazat artificiale funksionale si një lexim optik për bioassays. Biokimik. Biofiza. Res. Komuni., 448 (4), 418-423 (2014)[PubMed]

  32. M. Yasunaga, Y. Nakajima dhe Y. Ohmiya, Analiza e imazhit të biolumineshencës me dy ngjyra duke përdorur luciferazat e brumbujve që lëshojnë jeshile dhe të kuqe në rezolucion nënqelizor. anale. Bioanale. Chem., 406 (23), 5735-5742 (2014)[PubMed]

  33. Y. Ishii, C. Hayashi, Y. Suzuki dhe T. Hirano, 2,6-difenilimidazo[1,2-a]pirazin-3(7H)-one kimilumineshente: një hyrje e re në analogët e luciferinës Cypridina. Fotokimi. Fotobiol. Sci., 13 (2), 182-189 (2014)[PubMed]

  34. D. Kato, D. Shirakawa, R. Polz, M. Maenaka, M. Takeo, S. Negoro dhe K. Niwa, Një sistem kimilumineshence me një tenxhere të frymëzuar nga xixëllonja duke përdorur anhidrit n-propilfosfonik (T3P). Fotokimi. Fotobiol. Sci., 13 (12), 1640-1645 (2014)[PubMed]

  35. SB. Kim, S. Miller, N. Suzuki, T. Senda, R. Nishihara dhe K. Suzuki, Vetitë optike të luciferazave artificiale të drejtuara nga kationet. anale. Sci., 31 (10), 955-960 (2015)[PubMed]

  36. T. Nishiguchi, T. Yamada, Y. Nasu, M. Ito, H. Yoshimura dhe T. Ozawa, Zhvillimi i mutantëve me zhvendosje të kuqe që rrjedhin nga luciferaza e brumbullit brazilian Pyrearinus termitilluminans. J. Biomed. Opt., 20(10), 101205 (2015)[PubMed]

  37. GVM. Gabriel dhe VR. Viviani, Inxhinieria e vendeve të ndjeshme ndaj metaleve në Macrolampis sp2 luciferaza e xixëllonjave dhe përdorimi si një biosensor i ri ratiometrik biolumineshent për metalet e rënda. anale. Bioanale. Chem., 408(30), 8881-8893 (2016)[PubMed]

  38. DT. Amaral, G. Oliveira, JR. Silva dhe VR. Viviani, Një luciferazë e re portokalli që lëshon nga kliko-beetle Pyrophorus angustus në Amazonën Jugore (Coleoptera: Elateridae): struktura dhe marrëdhënia e ngjyrave të biolumineshencës, konsiderata evolucionare dhe ekologjike. Fotokimi. Fotobiol. Sci., 15 (9), 1148-1154 (2016)[PubMed]

  39. S. Ioka, T. Saitoh, S. Iwano, K. Suzuki, S. Maki, A. Miyawaki, M. Imoto dhe S. Nishiyama, Sinthesis of Firefly Luciferin analogues and Evaluation of the luminescent Properties. Kimi, 22 (27), 9330-9337 (2016)[PubMed]

  40. SB. Kim, R. Nishihara, D. Citterio dhe K. Suzuki, Sonda e tensionit molekular të koduar gjenetikisht për gjurmimin e ndërveprimeve protein-proteinë në qelizat e gjitarëve. Biokonjug. Chem., 27 (2), 354-362 (2016)[PubMed]

  41. T. Kuchimaru, S. Iwano, M. Kiyama, S. Mitsumata, T. Kadonosono, H. Niwa, S. Maki dhe S. Kizaka-Kondoh, Një analog i luciferinës që gjeneron bioluminescencë afër infra të kuqe arrin imazhe shumë të ndjeshme në indet e thella. Nat. Komun., 7, 11856 (2016)[PubMed]

  42. M. Kakiuchi, S. Ito, M. Yamaji, VR. Viviani, S. Maki dhe T. Hirano, Vetitë spektroskopike të analogëve të zëvendësuar me amine të Luciferinës së Firefly dhe Oksiluciferinës. Fotokimi. Photobiol., 93 (2), 486-494 (2017)[PubMed]

  43. K. Teranishi, Komponenti i dytë aktivizues i biolumineshencës në mykun ndriçues Mycena chlorophos. Luminescence, 32 (2), 182-189 (2017)[PubMed]

  44. K. Teranishi, Frenimi i biolumineshencës në gushat e gjalla të mykut ndriçues Mycena chlorophos nga acidi trans-4-aminocinamic. Biokimik. Biofiza. Res. Komuniteti, 488 (2), 335-339 (2017)[PubMed]

  45. SB. Kim, R. Nishihara, D. Citterio dhe K. Suzuki, Fabrikimi i një linje të re të luciferazave artificiale nga pishinat natyrale të luciferazës. ACS Krehër. Sci., 19 (9), 594-599 (2017)[PubMed]

  46. N. Noda, R. Awais, R. Sutton, M. Awais dhe T. Ozawa, Monitorimi dinamik i zhvendosjes së p53 në mitokondri për analizën e frenuesve specifikë duke përdorur komplementimin e fragmentit luciferazë. Bioteknol. Bioeng., 114(12), 2818-2827 (2017)[PubMed]

  47. M. Kiyama, S. Iwano, S. Otsuka, SW. Lu, R. Obata, A. Miyawaki, T. Hirano dhe SA. Maki, Përmirësimi kuantik i rendimentit të analogëve të luciferinës së xixëllonjave që lëshojnë dritë të kuqe për imazhe të biolumineshencës in vivo. Tetrahedron, 74(6), 652-660 (2018)[Lidhje]

  48. R. Nishihara, E. Hoshino, Y. Kakudate, S. Kishigami, N. Iwasawa, S. Sasaki, T. Nakajima, M. Sato, S. Nishiyama, D. Citterio, K. Suzuki dhe SB. Kim, analoge të koelenterazinës të konjuguara me azide dhe bojë për një platformë të imazhit molekular multipleks. Biokonjug. Chem., 29 (6), 1922-1931 (2018)[PubMed]

  49. K. Teranishi, Bioluminescence and chemiluminescence abilities of trans-3-hydroxyhispidin on the luminous fungus Mycena chlorophos. Lumineshenca, 33 (7), 1235-1242 (2018)[PubMed]

  50. R. Saito, T. Kuchimaru, S. Higashi, SW. Lu, M. Kiyama, S. Iwano, R. Obata, T. Hirano, S. Kizaka-Kondoh dhe SA. Maki, Vetitë e sintezës dhe lumineshencës së analogëve të luciferinës N-heterociklike infra të kuqe afër për imazhe optike in vivo. Dem. Kimik. Soc. Jpn., 92(3), 608-618 (2019)[Lidhje]

Cellgraph

Kronos Dio AB-2550

  1. (Hormone, CRE) P. J. He, Y. Fujimoto, N. Yamauchi and M. Hattori, Real-time monitoring of cAMP response element binding protein signaling in porcine granulosa cells modulated by ovarian factors. Mol. Cell. Biochem., 290(1-2), 177-184 (2006)[PubMed]

  2. (Gene silencing by siRNA) F. Sato, M. Kurokawa, N. Yamauchi and M. Hattori, Gene silencing of myostatin in differentiation of chicken embryonic myoblasts by small interfering RNA. Am. J. Physiol., Cell physiol., 291(3), C538-C545 (2006)[PubMed]

  3. (Clock gene) I. Kwon, J. Lee, S. H. Chang, N. C. Jung, B. J. Lee, G. H. Son, K. Kim and K. H. Lee, BMAL1 shuttling controls transactivation and degradation of the CLOCK/BMAL1 heterodimer. Mol. Cell. Biol., 26(19), 7318-7330 (2006)[PubMed]

  4. (Clock gene) A. Fujioka, N. Takashima and Y. Shigeyoshi, Circadian rhythm generation in a glioma cell line. Biochem. Biophys. Res. Commun., 346(1), 169-174 (2006)[PubMed]

  5. (Clock gene) S. Nishide, S. Honma, Y. Nakajima, M. Ikeda, K. Baba, Y. Ohmiya and K. Honma, New reporter system for Per1 and Bmal1 expressions revealed self-sustained circadian rhythms in peripheral tissues. Genes Cells, 11, 1173-1182 (2006) [PubMed]

  6. (Clock gene) P. J. He, M. Hirata, N. Yamauchi, S. Hashimoto and M. Hattori, The disruption of circadian clockwork in differentiating cells from rat reproductive tissues as identified by in vitro real-time monitoring system. J. Endocrinol., 193, 413-420 (2007)[PubMed]

  7. (Hormone, PRE) H. Fukuda, P. J. He, K. Yokota, T. Soh, N. Yamauchi and M. Hattori, Progesterone-dependent and -independent expression of the multidrug resistance type I gene in porcine granulosa cells. Mol. Cell. Biochem., 298, 179-186 (2007)[PubMed]

  8. (Clock gene) P. J. He, M. Hirata, N. Yamauchi, S. Hashimoto and M. Hattori, Gonadotropic regulation of circadian clockwork in rat granulose cells. Mol. Cell. Biochem., 302, 111-118 (2007)[PubMed]

  9. (Clock gene) T. Ohno, Y. Ohnishi and N. Ishida, A novel E4BP4 element drives circadian expression of mPeriod2. Nucleic Acids Res., 35(2), 648-655 (2007)[PubMed]

  10. (Clock gene) H. S. Shim, H. Kim, J. Lee, G. H. Son, S. Cho, T. H. Oh, S. H. Kang, D. S. Seen, K. H. Lee and K. Kim, Rapid activation of CLOCK by Ca2þ-dependent protein kinase C mediates resetting of the mammalian circadian clock. EMBO rep., 8, 366-371 (2007)[PubMed]

  11. (Clock gene) J. Hirayama, S. Sahar, B. Grimaldi, T. Tamaru, K. Takamatsu, Y. Nakahata and P. Sassone-Corsi, CLOCK-mediated acetylation of BMAL1 controls circadian function. Nature, 450, 1086-1090 (2007)[PubMed]

  12. (Dual color luciferase, Clock gene) T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, Simultaneous monitoring of independent gene expression patterns in two types of cocultured fibroblasts with different color-emitting luciferases. BMC Biotechnol., 8:40 (2008)[PubMed]

  13. (Clock gene) M. Akashi, N. Hayasaka, S. Yamazaki and K. Node, Mitogen-activated protein kinase is a functional component of the autonomous circadian system in the suprachiasmatic nucleus. J. Neurosci., 28(18), 4619-4623 (2008)[PubMed]

  14. (DDS, Gene transfection) S. Takae, K. Miyata,  M. Oba, T. Ishii, N. Nishiyama, K. Itaka, Y. Yamasaki, H. Koyama, and K. Kataoka, PEG-detachable polyplex micelles based on disulfide-linked block catiomers as bioresponsive nonviral gene vectors. J. Am. Chem. Soc., 130, 6001-6009 (2008)[PubMed]

  15. (Clock gene) Y. Onishi, S. Hanai, T. Ohno, Y. Hara and N. Ishida, Rhythmic SAF-A binding underlies circadian transcription of the Bmal1 gene. Mol. Cell. Biol., 28(10), 3477-3488 (2008)[PubMed]

  16. (Clock gene) J. Lee, Y. Lee, M. J. Lee, E. Park, S. H. Kang, C. H. Chung, K. H. Lee and K. Kim, Dual modification of BMAL1 by SUMO2/3 and ubiquitin promotes circadian activation of the CLOCK/BMAL1 complex. Mol. Cell. Biol., 28(19), 6056-6065 (2008)[PubMed]

  17. (Clock gene) A. Yoshikawa, H. Shimada, K. Numazawa, T. Sasaki, M. Ikeda, M. Kawashima, N. Kato, K. Tokunaga and T. Ebisawa, Establishment of human cell lines showing circadian rhythms of bioluminescence. Neurosci. Lett., 446, 40-44 (2008)[PubMed]

  18. (Clock gene) Y. Yamanaka, S. Honma and K. Honma, Scheduled exposures to a novel environment with a running-wheel differentially accelerate re-entrainment of mice peripheral clocks to new light–dark cycles. Genes to Cells, 13, 497-507 (2008)[PubMed]

  19. (Clock gene) N. Kon, T. Hirota, T. Kawamoto, Y. Kato, T. Tsubota and Y. Fukada, Activation of TGF-β/activin signalling resets the circadian clock through rapid induction of Dec1 transcripts. Nature Cell Biol., 10(12), 1463-1469 (2008)[PubMed]

  20. (DDS, Gene transfection) M. Oba, K. Aoyagi, K. Miyata, Y. Matsumoto, K. Itaka, N. Nishiyama, Y. Yamasaki, H. Koyama and K. Kataoka, Polyplex micelles with cyclic RGD peptide ligands and disulfide cross-links directing to the enhanced transfection via controlled intracellular trafficking. Mol. Pharm., 5(6), 1080-1092 (2008)[PubMed]

  21. (Clock gene) K. Ohsaki, K. Oishi, Y. Kozono, K. Nakayama, K. I. Nakayama and N. Ishida, The role of β-TrCP1 and β-TrCP2 in circadian rhythm generation by mediating degradation of clock protein PER2. J. Biochem., 144(5), 609-618 (2008)[PubMed]

  22. (Clock gene) S. Nishide, S. Honma and K. Honma, The circadian pacemaker in the cultured suprachiasmatic nucleus from pup mice is highly sensitive to external perturbation. Eur. J. Neurosci., 27(19), 2686-2690 (2008)[PubMed]

  23. (Clock gene) F. Yang, Y. Nakajima, M. Kumagai, Y. Ohmiya and M. Ikeda, The molecular mechanism regulating the autonomous circadian expression of Topoisomerase I in NIH3T3 cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 380(1), 22-27 (2009)[PubMed]

  24. (Clock gene, Hormone) S. Koinuma, K. Yagita, A. Fujioka, N. Takashima, T. Takumi and Y. Shigeyoshi, The resetting of the circadian rhythm by Prostaglandin J2 is distinctly phase-dependent. FEBS Lett., 583, 413-418 (2009)[PubMed]

  25. (Apoptosis) A. Kanno, Y. Umezawa and T. Ozawa, Detection of apoptosis using cyclic luciferase in living mammals. Methods Mol. Biol., 574, 105-114 (2009)[PubMed]

  26. (Clock gene, Hormone) M. Hirata, PJ. He, N. Shibuya, M. Uchikawa, N. Yamauchi, S. Hashimoto and M. Hattori, Progesterone, but not estradiol, synchronizes circadian oscillator in the uterus endometrial stromal cells. Mol. Cell. Biochem., 324(1-2), 31-38 (2009)[PubMed]

  27. (Differenciation) M. Kurokawa, F. Sato, S. Aramaki, T. Soh, N. Yamauchi and M. Hattori, Monitor of the myostatin autocrine action during differentiation of embryonic chicken myoblasts into myotubes: effect of IGF-I. Mol. Cell. Biochem., 331(1-2), 193-199 (2009)[PubMed]

  28. (Clock gene) M. Sasaki, H. Yoshitane, NH. Du, T. Okano and Y. Fukada, Preferential inhibition of BMAL2-CLOCK activity by PER2 reemphasizes its negative role and a positive role of BMAL2 in the circadian transcription. J. Biol. Chem., 284(37), 25149-25159 (2009)[PubMed]

  29. (Glycogenesis, Clock gene) R. Doi, K. Oishi and N. Ishida, CLOCK regulates circadian rhythms of hepatic glycogen synthesis through transcriptional activation of Gys2. J. Biol. Chem., 285(29), 22114-22121 (2010)[PubMed]

  30. (Apoptosis, Clock gene) K. Yoshida, P. He, N. Yamauchi, S. Hashimoto and M. Hattori, Up-regulation of circadian clock gene Period 2 in the prostate mesenchymal cells during flutamide-induced apoptosis. Mol. Cell. Biochem., 335(1-2), 37-45 (2010)[PubMed]

  31. (Clock gene) Y. Lee, J. Lee, I. Kwon, Y. Nakajima, Y. Ohmiya, GH. Son, KH. Lee and K. Kim, Coactivation of the CLOCK-BMAL1 complex by CBP mediates resetting of the circadian clock. J. Cell Sci., 123(20), 3547-3557 (2010)[PubMed]

  32. (Clock gene) T. Hirota, N. Kon, T. Itagaki, N. Hoshina, T. Okano, Y. Fukada, Transcriptional repressor TIEG1 regulates Bmal1 gene through GC box and controls circadian clockwork. Genes Cells., 15(2), 111-121 (2010)[PubMed]

  33. (cAMP monitoring) M. Takeuchi, Y. Nagaoka, T. Yamada, H. Takakura and T. Ozawa, Ratiometric bioluminescence indicators for monitoring cyclic adenosine 3',5'-monophosphate in live cells based on luciferase-fragment complementation. Anal. Chem., 82(22), 9306-9313 (2010)[PubMed]

  34. (DDS, Gene transfection) K. Miyata, N. Gouda, H. Takemoto, M. Oba, Y. Lee, H. Koyama, Y. Yamasaki, K. Itaka, N. Nishiyama, K. Kataoka, Enhanced transfection with silica-coated polyplexes loading plasmid DNA. Biomaterials, 31(17), 4764-4770 (2010)[PubMed]

  35. (Gene therapy) M. Oba, Y. Vachutinsky, K. Miyata, M. R. Kano, S. Ikeda, N. Nishiyama, K. Itaka, K. Miyazono, H. Koyama and K. Kataoka, Antiangiogenic gene therapy of solid tumor by systemic injection of polyplex micelles loading plasmid DNA encoding soluble flt-1. Mol. Pharm., 7(2), 501-509 (2010)[PubMed]

  36. (Dual color luciferase, Clock gene) T. Noguchi, T. Michihata, W. Nakamura, T. Takumi, R. Shimizu, M. Yamamoto, M. Ikeda, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, Dual-color luciferase mouse directly demonstrates coupled expression of two clock genes. Biochemistry, 49(37), 8053-8061 (2010)[PubMed]

  37. (Clock gene) Y. Onishi, HSG cells, a model in the submandibular clock. Biosci. Rep., 31(1), 57-62 (2011)[PubMed]

  38. (Stress response, Heat shock protein) J. Sun, C. S. Conn, Y. Han, V. Yeung and SB. Qian, PI3K-mTORC1 attenuates stress response by inhibiting cap-independent Hsp70 translation. J. Biol. Chem., 286(8), 6791-6800 (2011)[PubMed]

  39. (Clock gene) M. Uchikawa, M. Kawamura, N. Yamauchi and M. Hattori, Down-regulation of circadian clock gene Period 2 in uterine endometrial stromal cells of pregnant rats during decidualization. Chronobiol. Int., 28(1), 1-9 (2011)[PubMed]

  40. (Apoptosis, Differentiation, Clock gene) G. Chu, K. Yoshida, S. Narahara, M. Uchikawa, M. Kawamura, N. Yamauchi, Y. Xi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Alterations of circadian clockworks during differentiation and apoptosis of rat ovarian cells. Chronobiol. Int., 28(6), 477-487 (2011)[PubMed]

  41. (Allergy, Clock gene) Y. Nakamura, D. Harama, N. Shimokawa, M. Hara, R. Suzuki, Y. Tahara, K. Ishimaru, R. Katoh, K. Okumura, H. Ogawa, S. Shibata and A. Nakao, Circadian clock gene Period2 regulates a time-of-day-dependent variation in cutaneous anaphylactic reaction. J. Allergy Clin. Immunol., 127(4), 1038-1045 (2011)[PubMed]

  42. (Metabolism, Clock gene) H. Oike, K. Nagai, T. Fukushima, N. Ishida and M. Kobori, Feeding cues and injected nutrients induce acute expression of multiple clock genes in the mouse liver. PLoS One, 6(8), e23709 (2011)[PubMed]

  43. (Food, Clock gene) H. Oike, M. Kobori, T. Suzuki and N. Ishida, Caffeine lengthens circadian rhythms in mice. Biochem. Biophys. Res. Commun., 410(3), 654-658 (2011)[PubMed]

  44. (Toxicological screening) M. Yasunaga, N. Oumi, M. Osaki, Y. Kazuki, T. Nakanishi, M. Oshimura and K. Sato, Establishment and characterization of a transgenic mouse model for in vivo imaging of bmp4 expression in the pancreas. PLoS One, 6(9), e24956 (2011)[PubMed]

  45. (siRNA, DDS)RJ. Christie, K. Miyata, Y. Matsumoto, T. Nomoto, D. Menasco, TC Lai, M. Pennisi, K. Osada, S. Fukushima, N. Nishiyama, Y. Yamasaki and K. Kataoka, Effect of polymer structure on micelles formed between siRNA and cationic block copolymer comprising thiols and amidines. Biomacromolecules, 12(9), 3174-3185 (2011)[PubMed]

  46. (Clock gene) T. Tamaru, M. Hattori, K. Honda, I. Benjamin, T. Ozawa and K. Takamatsu, Synchronization of circadian Per2 rhythms and HSF1-BMAL1:CLOCK interaction in mouse fibroblasts after short-term heat shock pulse. PLoS One, 6(9), e24521 (2011)[PubMed]

  47. (Clock gene) DY. Kim, E. Kwak, SH. Kim, KH. Lee, KC. Woo and KT. Kim, hnRNP Q mediates a phase-dependent translation-coupled mRNA decay of mouse Period3. Nucleic Acids Res., 39(20), 8901-8914 (2011)[PubMed]

  48. (Photoreceptor) D. Kojima, S. Mori, M. Torii, A. Wada, R. Morishita and Y. Fukada, UV-sensitive photoreceptor protein OPN5 in humans and mice. PLoS One, 6(10), e26388 (2011)[PubMed]

  49. (Cell maturation, Clock gene) G. Chu, I. Misawa, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Contribution of FSH and triiodothyronine to the development of circadian clocks during granulosa cell maturation. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., Epub (2011)[PubMed]

  50. (Clock gene) Y. Onishi, K. Oishi, Y. Kawano and Y. Yamazaki, The harmala alkaloid harmine is a modulator of circadian Bmal1 transcription. Biosci. Rep., 32(1), 45-52 (2012)[PubMed]

  51. (Clock gene) S. Nishide, D. Ono, Y. Yamada, S. Honma and K. Honma, De novosynthesis of PERIOD initiates circadian oscillation in cultured mouse suprachiasmatic nucleus after prolonged inhibition of protein synthesis by cycloheximide. Eur. J. Neurosci., 35(2), 291-299 (2012)[PubMed]

  52. (Apoptosis) M. Ozaki, S. Haga and T. Ozawa, In Vivo Monitoring of Liver Damage Using Caspase-3 Probe. Theranostics, 2(2), 207-214 (2012)[PubMed]

  53. (Chondrogenesis, ATP oscillations) HJ. Kwon, Y. Ohmiya, K. Honma, S. Honma, T. Nagai, K. Saito and K. Yasuda, Synchronized ATP oscillations have a critical rolein prechondrogenic condensation during chondrogenesis. Cell Death Dis, 3, e278 (2012)[PubMed]

  54. (Clock gene) H. Chen, G. Chu, L. Zhao, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Rev-erbα regulates circadian rhythms and StAR expression in rat granulosa cells as identified by the agonist GSK4112. Biochem. Biophys. Res. Commun., 420(2), 374-379 (2012)[PubMed]

  55. (Dual color luciferase, Clock gene) T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, A dual-color luciferase assay system reveals circadian resetting of cultured fibroblasts by co-cultured adrenal glands. PLoS One, 7(5), e37093 (2012)[PubMed]

  56. (siRNA, DDS) RJ. Christie, Y. Matsumoto, K. Miyata, T. Nomoto, S. Fukushima, K. Osada, J. Halnaut, F. Pittella, HJ. Kim, N. Nishiyama and K. Kataoka, Targeted polymeric micelles for siRNA treatment of experimental cancer by intravenous injection. ACS Nano, Epub (2012)[PubMed]

  57. (Clock gene) H. Yoshitane, S. Honma, K. Imamura, H. Nakajima, S. Nishide, D. Ono, H. Kiyota, N. Shinozaki, H. Matsuki, N. Wada, H. Doi, T. Hamada, K. Honma and Y. Fukada, JNK regulates the photic response of the mammalian circadian clock. EMBO Rep., 13(5), 455-461 (2012)[PubMed]

  58. (Clock gene) Y. Uchida, T. Osaki, T. Yamasaki, T. Shimomura, S. Hata, K. Horikawa, S. Shibata, T. Todo, J. Hirayama and H. Nishina, Involvement of Stress Kinase Mitogen-activated Protein Kinase Kinase 7 in Regulation of Mammalian Circadian Clock. J. Biol. Chem., 287(11), 8318-26 (2012)[PubMed]

  59. (ATP, Ca2+, Chondrogenesis) HJ. Kwon, Y. Ohmiya and K. Yasuda, Dual-color system for simultaneously monitoring intracellular Ca2+ and ATP dynamics. Anal. Biochem., 430(1), 45-47 (2012)[PubMed]

  60. (Clock gene) Y. Onishi and Y. Kawano, Rhythmic binding of Topoisomerase I impacts on the transcription of Bmal1 and circadian period. Nucleic Acids Res., 40(19), 9482-92 (2012)[PubMed]

  61. (ATP, TGF-β, Chondrogenesis) HJ. Kwon, TGF-β but not BMP signaling induces prechondrogenic condensation through ATP oscillations during chondrogenesis. Biochem. Biophys. Res. Commun., 424(4), 793-800 (2012)[PubMed]

  62. (Chondrogenesis, ATP oscillations) HJ. Kwon, Extracellular ATP signaling via P2X4receptor and cAMP/PKA signaling mediate ATP oscillations essential for prechondrogenic condensation. J. Endocrinol., 214(3), 337-48 (2012)[PubMed]

  63. (siRNA, DDS) N. Gouda, K. Miyata, RJ. Christie, T. Suma, A. Kishimura, S. Fukushima, T. Nomoto, X. Liu, N. Nishiyama, and K. Kataoka, Silica nanogelling of environment-responsive PEGylated polyplexes for enhanced stability and intracellular delivery of siRNA. Biomaterials, 34(2), 562-570 (2013)[PubMed]

  64. (DDS, Gene transfection) S. Mochizuki, N. Kanegaea, K. Nishina, Y. Kamikawa, K. Koiwai, H. Masunaga and K. Sakurai, The role of the helper lipid dioleoylphosphatidylethanolamine (DOPE) for DNA transfection cooperating with a cationic lipid bearing ethylenediamine. Biochim. Biophys. Acta., 1828(2), 412-418 (2012)[PubMed]

  65. (Apoptosis, Bioluminescent probe) M. Ozaki, S. Haga, T. Ozawa, In Vivo Monitoring of Liver Damage Using Caspase-3 Probe. Theranostics, 2(2), 207-14 (2012)[PubMed]

  66. (mTOR, Nutrient signaling) CS. Conn and SB. Qian, Nutrient Signaling in Protein Homeostasis: An Increase in Quantity at the Expense of Quality. Sci. Signal, 6(271), ra24 (2013)[PubMed]

  67. (Clock gene) S. Cheon, N. Park, S. Cho and K. Kim, Glucocorticoid-mediated Period2induction delays the phase of circadian rhythm. Nucleic Acid Res., 41(12), 6161-74 (2013)[PubMed]

  68. (Clock gene) H. Chen, L. Zhao, M. Kumazawa, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Downregulation of core clock gene Bmal1 attenuates expression of progesterone and prostaglandin biosynthesis-related genes in rat luteinizing granulosa cells. Am. J. Physiol. Cell Physiol., 304(12), C1131-40 (2013)[PubMed]

  69. (Clock gene) H. Chen, L. Zhao, G. Chu, G. Kito, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, FSH induces the development of circadian clockwork in rat granulosa cells via a gap junction protein Cx43-dependent pathway. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., 304(6), E566-75 (2013)[PubMed]

  70. (Clock gene) H. Tasaki, L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Profiling of circadian genes expressed in the uterus endometrial stromal cells of pregnant rats as revealed by DNA microarray coupled with RNA interference. Front Endocrinol., 4, 82 (2013)[PubMed]

  71. (Clock gene) F. Yang, I. Inoue, M. Kumagai, S. Takahashi, Y. Nakajima and M. Ikeda, Real-Time Analysis of the Circadian Oscilletion of the Rev-Erbβ Promoter. J. Atheroscler. Thromb., 20(3), 267-76 (2013)[PubMed]

  72. (Clock gene) R. Satou, N. Sugihara, Y. Ishizuka, T. Matsukubo and Y. Onishi, DNA methylation of the BMAL1 promoter. Biochem. Biophys. Res. Commun., 440(3), 449-53 (2013)[PubMed]

  73. (Bioluminescent probe, Signal transduction) L. Yang, Y. Nasu, M. Hattori, H. Yoshimura, A. Kanno and T. Ozawa, Bioluminescent Probes to Analyze Ligand-Induced Phosphatidylinositol 3,4,5-Trisphosphate Production with Split Luciferase Complementation. Anal. Chem., 85(23), 11352-9 (2013)[PubMed]

  74. (Bioluminescent probe, Intracellular acidification) M. Hattori, S. Haga, H. Takakura, M. Ozaki and T. Ozawa, Sustained accurate recording of intracellular acidification in living tissues with a photo-controllable bioluminescent protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 110(23), 9332-7 (2013)[PubMed]

  75. (Clock gene) A. Hirano, K. Yumimoto, R. Tsunematsu, M. Matsumoto, M. Oyama, H. Kozuka-Hata, T. Nakagawa, D. Lanjakornsiripan, KI. Nakayama and Y. Fukada, FBXL21 Regulates Oscillation of the Circadian Clock through Ubiquitination and Stabilization of Cryptochromes. Cell, 152(5), 1106-18 (2013)[PubMed]

  76. (Proteolysis, siRNA) Y. Tsuchiya, H. Taniguchi, Y. Ito, T. Morita, MR. Karim, N. Ohtake, K. Fukagai, T. Ito, S. Okamuro, S. Iemura, T. Natsume, E. Nishida and A. Kobayashi, The Casein Kinase 2-Nrf1 Axis Controls the Clearance of Ubiquitinated Proteins by Regulating Proteasome Gene Expression. Mol. Cell Biol., 33(17), 3461-72 (2013)[PubMed]

  77. (Chondrogenesis, ATP oscillations) HJ. Kwon and Y. Ohmiya, Metabolomic Analysis of Differential Changes in Metabolites during ATP Oscillations in Chondrogenesis. Biomed. Res. Int., Epub 213972 (2013)[PubMed]

  78. (Chondrogenesis, ATP oscillations) HJ. Kwon, ATP oscillations mediate inductive action of FGF and Shh signaling on prechondrogenic condensation. Cell Biochem. Funct., 31(1), 75-81 (2013)[PubMed]

  79. (Chondrogenesis , ATP, Oxygen) HJ. Kwon, Y. Ohmiya and K. Yasuda, Simultaneous monitoring of intracellular ATP and oxygen levels in chondrogenic differentiation using a dual-color bioluminescence reporter. Luminescence, Epub 22 Oct (2013)[PubMed]

  80. (Clock gene) A. Natsubori, K. Honma and S. Honma, Differential responses of circadian Per2 expression rhythms in discrete brain areas to daily injection of methamphetamine and restricted feeding in rats. Eur. J. Neurosci., 37, 251-8 (2013)[PubMed]

  81. (Clock gene) D. Ono, S. Honma and K. Honma, Cryptochromes are critical for the development of coherent circadian rhythms in the mouse suprachiasmatic nucleus. Nat. Commun., 4, 1666 (2013)[PubMed]

  82. (Clock gene) JY. Noh, DH. Han, MH. Kim, IG. Ko, SE. Kim, N. Park, HK. Choe, KH. Kim, K. Kim, CJ. Kim and S. Cho, Presence of multiple peripheral circadian oscillators in the tissues controlling voiding function in mice. Exp. Mol. Med., 46, e81 (2014)[PubMed]

  83. (Clock gene) S. Nishide, K. Hashimoto, T. Nishio, K. Honma, S. Honma, Organ-specific development characterizes circadian clock gene Per2 expression in rats. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 306(1), R67-74 (2014)[PubMed]

  84. (Clock gene) NC. Gossan, F. Zhang, B. Guo, D. Jin, H. Yoshitane, A. Yao, N. Glossop, YQ. Zhang, Y. Fukada and QJ. Meng, The E3 ubiquitin ligase UBE3A is an integral component of the molecular circadian clock through regulating the BMAL1 transcription factor. Nucleic Acids Res., 42(9), 5765-75 (2014)[PubMed]

  85. (Clock gene) A. Natsubori, K. Honma and S. Honma, Dual regulation of clock gene Per2expression in discrete brain areas by the circadian pacemaker and methamphetamine-induced oscillator in rats. Eur. J. Neurosci., 39(2), 229-40 (2014)[PubMed]

  86. (DDS) H. Tanaka, H. Akita, R. Ishiba, K. Tange, M. Arai, K. Kubo and H. Harashima, Neutral biodegradable lipid-envelope-type nanoparticle using vitamin A-Scaffold for nuclear targeting of plasmid DNA. Biomaterials, 35(5), 1755-61 (2014)[PubMed]

  87. (DDS, siRNA) S. Murayama, P. Kos, K. Miyata, K Kataoka, E. Wagner and M. Kato, Gene Regulation by Intracellular Delivery and Photodegradation of Nanoparticles Containing Small Interfering RNA. Macromol. Biosci., 14(5), 626-31 (2014)[PubMed]

  88. (Clock gene) Y. Ogawa, Y. Kawano, Y. Yamazaki and Y. Onishi, Shikonin shortens the circadian period: Possible involvement of Top2 inhibition. Biochem. Biophys. Res. Commun., 443(1), 339-43 (2014)[PubMed]

  89. (DDS, siRNA) HJ. Kim, K. Miyata, T. Nomoto, M. Zheng, A. Kim, X. Liu, H. Cabral, RJ. Christie, N. Nishiyama and K. Kataoka, siRNA delivery from triblock copolymer micelles with spatially-ordered compartments of PEG shell, siRNA-loaded intermediate layer, and hydrophobic core. Biomaterials, 35(15), 4548-56 (2014)[PubMed]

  90. (Clock gene) SK. Chun, J. Jang, S. Chung, H. Yun, NJ. Kim, JW. Jung, GH. Son, YG. Suh and K. Kim, Identification and Validation of Cryptochrome Inhibitors That Modulate the Molecular Circadian Clock. ACS Chem. Biol., 9(3), 703-10 (2014)[PubMed]

  91. (DDS, Cancer) GX. Zhao, H. Tanaka, CW. Kim, K. Li, D. Funamoto, T. Nobori, Y. Nakamura, T. Niidome, A. Kishimura, T. Mori and Y. Katayama, Histidinylated poly-L-lysine-based vectors for cancer-specific gene expression via enhancing the endosomal escape. J. Biomater. Sci. Polym. Ed., 25(5), 519-34 (2014)[PubMed]

  92. (Clock gene) SR. Moore, J. Pruszka, J. Vallance, E. Aihara, T. Matsuura, MH. Montrose, NF. Shroyer and CI. Hong, Robust circadian rhythms in organoid cultures from PERIOD2::LUCIFERASE mouse small intestine. Dis. Models Mech., 7(9), 1123-30 (2014)[PubMed]

  93. (DDS, siRNA) Y. Oe, RJ. Christie, M. Naito, SA. Low, S. Fukushima, K. Toh, Y. Miura, Y. Matsumoto, N. Nishiyama, K. Miyata and K. Kataoka, Actively-targeted polyion complex micelles stabilized by cholesterol and disulfide cross-linking for systemic delivery of siRNA to solid tumors. Biomaterials, 35(27), 7887-95 (2014)[PubMed]

  94. (Clock gene) SK. Chun, J. Jang, S. Chung, H. Yun, NJ. Kim, JW. Jung, GH. Son, YG. Suh and K. Kim, Identification and Validation of Cryptochrome Inhibitors That Modulate the Molecular Circadian Clock. ACS Chem. Biol., 9(3), 703-10 (2014)[PubMed]

  95. (Chondrogenesis, ATP oscillations) HJ. Kwon, S. Kurono, Y. Kaneko, Y. Ohmiya and K. Yasuda, Analysis of proteins showing differential changes during ATP oscillations in chondrogenesis. Cell Biochem. Funct., 32(5), 429-37 (2014)[PubMed]

  96. (Clock gene, Allergy) Y. Nakamura, N. Nakano, K. Ishimaru, M. Hara, T. Ikegami, Y. Tahara, R. Katoh, H. Ogawa, K. Okumura, S. Shibata, C. Nishiyama and A. Nakao, Circadian regulation of allergic reactions by the mast cell clock in mice. J. Allergy Clin. Immunol., 133(2), 568-75 (2014)[PubMed]

  97. (Clock gene) M. Kawamura, H. Tasaki, I. Misawa, G. Chu, N. Yamauchi and M. Hattori, Contribution of testosterone to the clock system in rat prostate mesenchyme cells. Andrology, 2(2), 225-33 (2014)[PubMed]

  98. (Clock gene) N. Kon, T. Yoshikawa, S. Honma, Y. Yamagata, H. Yoshitane, K. Shimizu, Y. Sugiyama, C. Hara, I. Kameshita, K. Honma and Y. Fukada, CaMKII is essential for cellular clock and coupling between morning and evening behavioral rhythms. Genes Dev., 28, 1101-1110, (2014)[PubMed]

  99. (Clock gene) K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi and M. Hattori, REV-ERBα Inhibits the PTGS2 Expression in Bovine Uterus Endometrium Stromal and Epithelial Cells Exposed to Ovarian Steroids. J. Reprod. Dev., 60(5), 362-370 (2014)[PubMed]

  100. (Intracellular calcium) S. Suzuki, K. Murotomi, Y. Nakajima, K. Kawai, K. Ohta, K. Warita, T. Miki and Y. Takeuchi, Development of an Artificial Calcium-Dependent Transcription Factor To Detect Sustained Intracellular Calcium Elevation. ACS Synth. Biol., 3(10), 717-722 (2014)[PubMed]

  101. (Development) M. Matsuda, M. Koga, K. Woltjen, E. Nishida and M. Ebisuya, Synthetic lateral inhibition governs cell-type bifurcation with robust ratios. Nat. Commun., 6, 6196 (2015)[PubMed]

  102. (Chondrogenesis, ATP) HJ. Kwon and Y. Han, Dual Monitoring of Secretion and ATP Levels during Chondrogenesis Using Perfusion Culture-Combined Bioluminescence Monitoring System. Biomed. Res. Int., 219068 (2015)[PubMed]

  103. (Stress) X. Gao, J. Wan, B. Liu, M. Ma, B. Shen and SB. Qian, Quantitative profiling of initiating ribosomes in vivo. Nat. Methods, 12(2), 147-153 (2015)[PubMed]

  104. (Heat shock response) J. Zhou, J. Wan, X. Gao, X. Zhang, SR. Jaffrey and SB. Qian, Dynamic m6A mRNA methylation directs translational control of heat shock response. Nature, 526(7574), 591-594 (2015)[PubMed]

  105. (Clock gene) Y. Lee, SK. Chun and K. Kim, Sumoylation controls CLOCK-BMAL1-mediated clock resetting via CBP recruitment in nuclear transcriptional foci. Biochim. Biophys. Acta, 1853(10), 2697-2708 (2015)[PubMed]

  106. (Clock gene) J. Koo, HK. Choe, HD. Kim, SK. Chun, GH. Son and K. Kim, Effect of Mefloquine, a Gap Junction Blocker, on Circadian Period2 Gene Oscillation in the Mouse Suprachiasmatic Nucleus Ex Vivo. Endocrinol. Metab., 30(3), 361-370 (2015)[PubMed]

  107. (Aldosterone synthesis) D. Yarimizu, M. Doi, T. Ota and H. Okamura, Stimulus-selective induction of the orphan nuclear receptor NGFIB underlies different influences of angiotensin II and potassium on the human adrenal gland zona glomerulosaspecific 3β-HSD isoform gene expression in adrenocortical H295R cells. Endocr. J., 62(9), 765-776 (2015)[PubMed]

  108. (Clock gene) M. Nakajima, S. Koinuma and Y. Shigeyoshi, Reduction of translation rate stabilizes circadian rhythm and reduces the magnitude of phase shift. Biochem. Biophys. Res. Commun., 464(1), 354-359 (2015)[PubMed]

  109. (Clock gene) H. Tasaki, L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Inhibitory role of REV-ERBα in the expression of bone morphogenetic protein gene family in rat uterus endometrium stromal cells. Am. J. Physiol. Cell Physiol., 308(7), C528-538 (2015)[PubMed]

  110. (Clock gene) K. Isayama, L. Zhao, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Removal of Rev-erbα inhibition contributes to the prostaglandin G/H synthase 2 expression in rat endometrial stromal cells. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., 308(8), E650-661 (2015)[PubMed]

  111. (Clock gene) H. Chen, K. Isayama, M. Kumazawa, L. Zhao, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, Integration of the nuclear receptor REV-ERBα linked with circadian oscillators in the expressions of Alas1, Ppargc1a, and Il6 genes in rat granulosa cells. Chronobiol. Int., 32(6), 739-749 (2015)[PubMed]

  112. (Carcinogenesis) RS. Kalra, CT. Cheung, A. Chaudhary, J. Prakash, SC. Kaul and Renu Wadhwa, CARF (Collaborator of ARF) overexpression in p53-deficient cells promotes carcinogenesis. Mol. Oncol., 9(9), 1877-1889 (2015)[PubMed]

  113. (Skin sensitization, IL-8) Y. Kimura, C. Fujimura, Y. Ito, T. Takahashi, Y. Nakajima, Y. Ohmiya and S. Aiba, Optimization of the IL-8 Luc assay as an in vitro test for skin sensitization. Toxicol. In Vitro, 29(7), 1816-1830 (2015)[PubMed]

  114. (Luciferase) M. Yasunaga, K. Murotomi, H. Abe, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Ohbayashi, M. Oshimura, T. Noguchi, K. Niwa, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, Highly sensitive luciferase reporter assay using a potent destabilization sequence of calpain 3. J. Biotechnol., 194, 115-123 (2015)[PubMed]

  115. (Clock gene) N. Kon, Y. Sugiyama, H. Yoshitane, I. Kameshita and Y. Fukada, Cell-based inhibitor screening identifies multiple protein kinases important for circadian clock oscillations. Commun. Integr. Biol., 8(4), e982405 (2015)[PubMed]

  116. (Clock gene) T. Tamaru, M. Hattori, K. Honda, Y. Nakahata, P. Sassone-Corsi, GTJ. van der Horst, T. Ozawa and K. Takamatsu, CRY Drives Cyclic CK2-Mediated BMAL1 Phosphorylation to Control the Mammalian Circadian Clock. PLoS Biol., 13(11), e1002293 (2015)[PubMed]

  117. (Clock gene) T. Yoshikawa, Y. Nakajima, Y. Yamada, R. Enoki, K. Watanabe, M. Yamazaki, K. Sakimura, S. Honma and K. Honma, Spatiotemporal profiles of arginine vasopressin transcription in cultured suprachiasmatic nucleus. Eur. J. Neurosci., 42(9), 2678-2689 (2015)[PubMed]

  118. (Clock gene) M. Mieda, D. Ono, E. Hasegawa, H. Okamoto, K. Honma, S. Honma and T. Sakurai, Cellular Clocks in AVP Neurons of the SCN Are Critical for Interneuronal Coupling Regulating Circadian Behavior Rhythm. Neuron, 85(5), 1103-1116 (2015)[PubMed]

  119. (Clock gene) M. Doi, I. Murai, S. Kunisue, G. Setsu, N. Uchio, R. Tanaka, S. Kobayashi, H. Shimatani, H. Hayashi, HW. Chao, Y. Nakagawa, Y. Takahashi, Y. Hotta, J. Yasunaga, M. Matsuoka, MH. Hastings, H. Kiyonari and H. Okamura, Gpr176 is a Gz-linked orphan G-protein-coupled receptor that sets the pace of circadian behavior. Nat. Commun., 7, 10583 (2016)[PubMed]

  120. (Clock gene) L. Zhao, K. Isayama, H. Chen, N. Yamauchi, Y. Shigeyoshi, S. Hashimoto and M. Hattori, The nuclear receptor REV-ERBa represses the transcription of growth/differentiation factor 10 and 15 genes in rat endometrium stromal cells. Physiol. Rep., 4(2), e12663 (2016)[PubMed]

  121. (Clock gene) ME. Goya, A. Romanowski, CS. Caldart, CY. Bénard, and DA. Golombek, Circadian rhythms identified in Caenorhabditis elegans by in vivo long-term monitoring of a bioluminescent reporter. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 113(48), E7837-7845 (2016)[PubMed]

  122. (Clock gene, Cell cycle) T. Matsu-ura, A. Dovzhenok, E. Aihara, J. Rood, H. Le, Y. Ren, AE. Rosselot, T. Zhang, C. Lee, K. Obrietan, MH. Montrose, S. Lim and SR. Moore, Intercellular Coupling of the Cell Cycle and Circadian Clock in Adult Stem Cell Culture. Mol. Cell, 64(5), 900-912 (2016)[PubMed]

  123. (Clock gene) A. Hirano, T. Nakagawa, H. Yoshitane, M. Oyama, H. Kozuka-Hata, D. Lanjakornsiripan and Y. Fukada, USP7 and TDP-43: Pleiotropic Regulation of Cryptochrome Protein Stability Paces the Oscillation of the Mammalian Circadian Clock. PLoS One, 11(4), e0154263 (2016)[PubMed]

  124. (Clock gene) K. Shimizu, Y. Kobayashi, E. Nakatsuji, M. Yamazaki, S. Shimba, K. Sakimura and Y. Fukada, SCOP/PHLPP1b mediates circadian regulation of long-term recognition memory. Nat. Commun., 7, 12926 (2016)[PubMed]

  125. (Clock gene) T. Yoshikawa and S. Honma, Lithium lengthens circadian period of cultured brain slices in area specific manner. Behav. Brain Res., 314, 30-37 (2016)[PubMed]

  126. (Clock gene) D. Ono, S. Honma and K. Honma, Differential roles of AVP and VIP signaling in the postnatal changes of neural networks for coherent circadian rhythms in the SCN. Sci. Adv., 2(9), e1600960 (2016)[PubMed]

  127. (Clock gene) Y. Nakamura, K. Ishimaru, S. Shibata and A. Nakao, Regulation of plasma histamine levels by the mast cell clock and its modulation by stress. Sci. Rep., 7, 39934 (2017)[PubMed]

  128. (Transcription factor) M. Futami, T. Nakano, M. Yasunaga, M. Makihara, T. Asama, Y. Hagihara, Y. Nakajima and J. Futami, Enhanced in-cell folding of reversibly cationized transcription factor using amphipathic peptide. J. Biosci. Bioeng., 123(4), 419-424 (2017)[PubMed]

  129. (Clock gene) M. Mieda, E. Hasegawa, N. Kessaris and T. Sakurai, Fine-tuning circadian rhythms: The importance of Bmal1 expression in the ventral forebrain. Front. Neurosci., 11, 55 (2017)[PubMed]

  130. (Clock gene) N. Park, JE. Song, S. Jeong, TT. Tran, HW. Ko, EY. Kim, Vaccinia-related kinase 3 (VRK3) sets the circadian period and amplitude by affecting the subcellular localization of clock proteins in mammalian cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 487(2), 320-326 (2017)[PubMed]

  131. (Clock gene) T. Kawauchi, K. Ishimaru, Y. Nakamura, N. Nakano, M. Hara, H. Ogawa, K. Okumura, S. Shibata and A. Nakao, Clock-dependent temporal regulation of IL-33/ST2-mediated mast cell response. Allergol. Int., 66(3), 472-478 (2017)[PubMed]

  132. (Clock gene) R. Ikarashi, H. Akechi, Y. Kanda, A. Ahmad, K. Takeuchi, E. Morioka, T. Sugiyama, T. Ebisawa, M. Ikeda and M. Ikeda, Regulation of molecular clock oscillations and phagocytic activity via muscarinic Ca2+ signaling in human retinal pigment epithelial cells. Sci. Rep., 7, 44175 (2017)[PubMed]

  133. (DDS, siRNA) M. Naito, R. Azuma, H. Takemoto, M. Hori, N. Yoshinaga, S. Osawa, R. Kamegawa, HJ. Kim, T. Ishii, N. Nishiyama, K. Miyata and K. Kataoka, Multilayered polyion complexes with dissolvable silica layer covered by controlling densities of cRGD-conjugated PEG chains for cancer-targeted siRNA delivery. J. Biomater. Sci. Polym. Ed., 28(10-12), 1109-1123 (2017)[PubMed]

  134. (Clock gene) D. Ono, S. Honma, Y. Nakajima, S. Kuroda, R. Enoki and K. Honma, Dissociation of Per1 and Bmal1 circadian rhythms in the suprachiasmatic nucleus in parallel with behavioral outputs. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 114(18), E3699-E3708 (2017)[PubMed]

  135. (Clock gene) T. Tomita, R. Kurita and Y. Onishi, Epigenetic regulation of the circadian clock: role of 5-aza-2’-deoxycytidine. Biosci. Rep., 37(3), BSR20170053 (2017)[PubMed]

  136. (Cytotoxicity) M. Yasunaga, Y. Fujita, R. Saito, M. Oshimura and Y. Nakajima, Continuous long-term cytotoxicity monitoring in 3D spheroids of beetle luciferase-expressing hepatocytes by nondestructive bioluminescence measurement. BMC Biotechnol., 17(1), 54 (2017)[PubMed]

  137. (Clock gene) G. Kurosawa, A. Fujioka, S. Koinuma, A. Mochizuki, Y. Shigeyoshi, Temperature-amplitude coupling for stable biological rhythms at different temperatures. PLoS Comput. Biol., 13(6), e1005501 (2017)[PubMed]

  138. (mRNA Translation) RA. Coots, XM. Liu, Y. Mao, L. Dong, J. Zhou, J. Wan, X. Zhang and SB. Qian, m6A facilitates eIF4F-independent mRNA translation. Mol. Cell, 68(3), 504-514 (2017)[PubMed]

  139. (Clock gene) N. Hayasaka, A. Hirano, Y. Miyoshi, IT. Tokuda, H. Yoshitane, J. Matsuda and Y. Fukada, Salt-inducible kinase 3 regulates the mammalian circadian clock by destabilizing PER2 protein. eLife, 6, e24779 (2017)[PubMed]

  140. (Clock gene) M. Sujino, T. Asakawa, M. Nagano, S. Koinuma, K. Masumoto and Y. Shigeyoshi, CLOCKΔ19 mutation modifies the manner of synchrony among oscillation neurons in the suprachiasmatic nucleus. Sci. Rep., 8(1), 854 (2018)[PubMed]

  141. (Clock gene) A. Sengiku, M. Ueda, J. Kono, T. Sano, N. Nishikawa, S Kunisue, K. Tsujihana, LS. Liou, A. Kanematsu and S. Shimba, M. Doi, H. Okamura, O. Ogawa and H. Negoro, Circadian coordination of ATP release in the urothelium via connexin43 hemichannels. Sci. Rep., 8(1), 1996 (2018)[PubMed]

  142. (Clock gene) T. Ihara, T. Mitsui, Y. Nakamura, M. Kanda, S. Tsuchiya, S. Kira, H. Nakagomi, N. Sawada, Y. Hirayama, K. Shibata, E. Shigetomi, Y. Shinozaki, M. Yoshiyama, A. Nakao, M. Takeda and S. Koizumi, The Circadian expression of Piezo1, TRPV4, Connexin26, and VNUT, associated with the expression levels of the clock genes in mouse primary cultured urothelial cells. Neurourol. Urodyn., 37(3), 942-951 (2018)[PubMed]

  143. (Clock gene) J. Jang, S. Chung, Y. Choi, HY. Lim, Y. Son, SK. Chun, GH. Son, K. Kim, YG. Suh, JW. Jung, The cryptochrome inhibitor KS15 enhances E-box-mediated transcription by disrupting the feedback action of a circadian transcription-repressor complex. Life Sci., 200, 49-55 (2018)[PubMed]

  144. (Clock gene, Cellular stress) K. Imamura, H. Yoshitane, K. Hattori, M. Yamaguchi, K. Yoshida, T. Okubo, I. Naguro, H. Ichijo and Y. Fukada, ASK family kinases mediate cellular stress and redox signaling to circadian clock. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 115(14), 3646-3651 (2018)[PubMed]

  145. (Clock gene) E. Morioka, Y. Kanda, H. Koizumi, T. Miyamoto and M. Ikeda, Histamine regulates molecular clock oscillations in human retinal pigment epithelial cells via H1 receptors. Front. Endocrinol., 9, 108 (2018)[PubMed]

  146. (Necroptosis, Hypoxia) S. Haga, A. Kanno, T. Ozawa, N. Morita, M. Asano and M. Ozaki, Detection of necroptosis in ligand-mediated and hypoxia-induced injury of hepatocytes using a novel optic probe-detecting receptor-Interacting protein (RIP)1/RIP3 Binding. Oncol. Res., 26(3), 503-513 (2018)[PubMed]

  147. (DDS) H. Tanaka, T. Nakatani, T. Furihata, K. Tange, Y. Nakai, H. Yoshioka, H. Harashima and H. Akita, In vivo introduction of mRNA encapsulated in lipid nanoparticles to brain neuronal cells and astrocytes via intracerebroventricular administration. Mol. Pharm., 15(5), 2060-2067 (2018)[PubMed]

  148. (Clock gene, Review) C. Ramanathan and AC. Liu, Developing mammalian cellular clock models using firefly luciferase reporter. Methods Mol. Biol., 1755, 49-64 (2018)[PubMed]

  149. (Myogenesis) Q. Li, H. Yoshimura, M. Komiya, K. Tajiri, M. Uesugi, Y. Hata and T. Ozawa, A robust split-luciferase-based cell fusion screening for discovering myogenesis-promoting molecules. Analyst, 143(14), 3472-3480 (2018)[PubMed]

  150. (Clock gene) S. Nishide, S. Honma and K. Honma, Two coupled circadian oscillations regulate Bmal1-ELuc and Per2-SLR2 expression in the mouse suprachiasmatic nucleus. Sci. Rep., 8(1), 14765 (2018)[PubMed]

  151. (Anti-inflammation, IL-6, IL-10) P. Saiki, Y. Nakajima, LJLD. Van Griensven, K. Miyazaki, Real-time monitoring of IL-6 and IL-10 reporter expression for anti-inflammation activity in live RAW 264.7 cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 503(3), 885-890 (2018)[PubMed]

  152. (Clock gene, UV stress) G. Kawamura, M. Hattori, K. Takamatsu, T. Tsukada, Y. Ninomiya, I. Benjamin, P. Sassone-Corsi, T. Ozawa and T. Tamaru, Cooperative interaction among BMAL1, HSF1, and p53 protects mammalian cells from UV stress. Commun. Biol., 1, 204 (2018)[PubMed]

  153. (Clock gene) AR. Saran, D. Kalinowska, S. Oh, R. Janknecht, L. DiTacchio, JMJD5 links CRY1 function and proteasomal degradation. PLoS Biol., 16(11), e2006145 (2018)[PubMed]

  154. (Clock gene) J. Lee, E. Park, GH. Kim, I. Kwon and K. Kim, A splice variant of human Bmal1 acts as a negative regulator of the molecular circadian clock. Exp. Mol. Med., 50(12), 159 (2018)[PudMed]

  155. (Clock gene) Y. Maruyama, Y. Asaoka, K. Nakahama, T. Tamaru, K. Takamatsu, N. Takamatsu, A. Hattori, S. Nishina, N. Azuma, A. Kawahara, K. Kume and H. Nishina, The clock components Period2, Cryptochrome1a, and Cryptochrome2a function in establishing light-dependent behavioral rhythms and/or total activity levels in zebrafish. Sci. Rep., 9(1), 196 (2019)[PubMed]

  156. (Clock gene, ER stress) L. Gao, H. Chen, C. Li, Y. Xiao, D. Yang, M. Zhang, D. Zhou, W. Liu, A. Wang and Y. Jin, ER stress activation impairs the expression of circadian clock and clock-controlled genes in NIH3T3 cells via an ATF4-dependent mechanism. Cell. Signal., 57, 89-101 (2019)[PubMed]

Kronos HT (WSL-1565)

  1. (Cytotoxicity) S. Wakuri, K. Yamakage, Y. Kazuki, K. Kazuki, M. Oshimura, S. Aburatani, M. Yasunaga and Y. Nakajima, Correlation between luminescence intensity and cytotoxicity in cell-based cytotoxicity assay using luciferase. Anal. Biochem., 522, 18-29 (2017)[PubMed]

  2. (Oxidative stress) Y. Tabei, K. Murotomi, A. Umeno, M. Horie, Y. Tsujino, B. Masutani, Y. Yoshida, Y. Nakajima, Antioxidant properties of 5-hydroxy-4-phenyl-butenolide via activation of Nrf2/ARE signaling pathway. Food Chem. Toxicol., 107(A), 129-137 (2017)[PubMed]

  3. (Micro RNA) Y. Mie, Y. Hirano, K. Kowata, A. Nakamura, M. Yasunaga, Y. Nakajima and Y. Komatsu, Function control of anti-microRNA oligonucleotides using interstrand cross-linked duplexes, Mol. Ther. Nucleic Acids, 10, 64-74 (2018)[PubMed]

  4. (Anti-inflammation) P. Saiki, Y. Kawano, Y. Nakajima, LJLD. Van Griensven and K. Miyazaki, Novel and stable dual-color IL-6 and IL-10 reporters derived from RAW 264.7 for anti-inflammation screening of natural products. Int. J. Mol. Sci., 20(18), 4620 (2019)[PubMed]

  5. (Cytotoxicity) S. Iwado, S. Abe, M. Oshimura, Y. Kazuki and Y. Nakajima, Bioluminescence measurement of time-dependent dynamic changes of CYP-mediated cytotoxicity in CYP-expressing luminescent HepG2 cells. Int. J. Mol. Sci., 22(6), 2843 (2021)[PubMed]

  6. (Clock gene) JS. Huh, S. Lee, DS. Kim, MS. Choi, H. Choi and KH. Lee, Antioxidative and circadian rhythm regulation effect of Quercus gilva extract. J. Korean Wood Sci. Technol., 50(5), 338-352 (2022)[Link]

LumiFL

LumiFL SpectroCapture (AB-1850)

  1. Y. Nakajima, K. Kobayashi, K. Yamagishi, T. Enomoto and Y. Ohmiya, cDNA Cloning and Characterization of a Secreted Luciferase from the Luminous Japanese Ostracod, Cypridina noctiluca. Biosci. Biotechnol. Biochem., 68(3), 565-570 (2004)[PubMed]

  2. Y. Nakajima, T. Kimura, C. Suzuki and Y. Ohmiya, Improved Expression of Novel Red- and Green-emitting Luciferases of Phrixothrix Railroad Worms in Mammalian Cells. Biosci. Biotechnol. Biochem., 68(4), 948-951 (2004)[PubMed]

  3. Y. Nakajima, M. Ikeda, T. Kimura, S. Honma, Y. Ohmiya and K. Honma, Bidirectional role of orphan nuclear receptor RORα in clock gene transcriptions demonstrated by a novel reporter assay system. FEBS Lett., 565, 122-126 (2004)[PubMed]

  4. T. Otsuji, E. Okuda-Ashitaka, S. Kojima, H. Akiyama, S. Ito and Y. Ohmiya, Monitoring for dynamic biological processing by intramolecular bioluminescence resonance energy transfer system using secreted luciferase.  Anal. Biochem., 329, 230-237 (2004)[PubMed]

  5. C. Suzuki, Y. Nakajima, H. Akimoto, C. Wu and Y. Ohmiya, A new additional reporter enzyme, dinoflagellate luciferase, for monitoring of gene expression in mammalian cells. Gene, 344, 61-66 (2005)[PubMed]

  6. Y. Ohmiya, S. Kojima, M. Nakamura and H. Niwa, Bioluminescence in the Limpet-Like Snail, Latia neritoides. Bull. Chem. Soc. Japan, 78(7), 1197-1205 (2005)[PubMed]

  7. Y. Nakajima, T. Kimura, K. Sugata, T. Enomoto, A. Asakawa, H. Kubota, M. Ikeda and Y. Ohmiya, Multicolor luciferase assay system: one-step monitoring of multiple gene expressions with a signal substrate. BioTechniques, 38(6), 891-894 (2005)[PubMed]

  8. M. Nakamura, M. Mamino, M. Masaki, S. Maki, R. Matsui, S. Kojima, T. Hirano, Y. Ohmiya and H. Niwa, Bioluminescence activity of Latia luciferin analogues: replacement of the 2,6,6-trimethylcyclohexene ring onto the methyl-substituted phenyl groups. Tetrahedron Lett., 46(1), 53-56 (2005)[Link]

  9. H. Kondo, T. Igarashi, S. Maki, H. Niwa, H. Ikeda and T. Hirano, Substituent effects on the kinetics for the chemiluminescence reaction of 6-arylimidazo[1,2-a]pyrazin-3(7H)-ones (Cypridina luciferin analogues): support for the single electron transfer (SET)–oxygenation mechanism with triplet molecular oxygen. Tetrahedron Lett., 46(45), 7701-7704 (2005)[Link]

  10. K. Mori, S. Maki, H. Niwa, H. Ikeda and T. Hirano, Real light emitter in the bioluminescence of the calcium-activated photoproteins aequorin and obelin: light emission from the singlet-excited state of coelenteramide phenolate anion in a contact ion pair. Tetrahedron, 62(26), 6272-6288 (2006)[Link]

  11. T. Noguchi, M. Ikeda, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, Simultaneous monitoring of independent gene expression patterns in two types of cocultured fibroblasts with differernt color-emitting luciferase. BMC Biotechnol., 8, 40 (2008)[PubMed]

  12. K. Teranishi and O. Shimomura, Bioluminescence of the arm light organs of the luminous squid Watasenia scintillans. Biochim Biophys Acta, 1780(5), 784-792 (2008)[PubMed]

  13. C. Suzuki-Ogoh, C. Wu and Y. Ohmiya, C-terminal region of the active domain enhances enzymatic activity in dinoflagellate luciferase. Photochem. Photobiol. Sci., 7(2), 208-211 (2008)[PubMed]

  14. Y. Takenaka, H. Masuda, A. Yamaguchi, S. Nishikawa, Y. Shigeri, Y. Yoshida, and H. Mizuno, Two forms of secreted and thermostable luciferases from the marine copepod crustacean, Metridia pacifica. Gene, 425(1-2), 28-35 (2008)[PubMed]

  15. T. Hirano, Y. Takahashi, H. Kondo, S. Maki, S. Kojima, H. Ikeda and H. Niwa, The reaction mechanism for the high quantum yield of Cypridina (Vargula) bioluminescence supported by the chemiluminescence of 6-aryl-2-methylimidazo[1,2-a]pyrazin-3(7H)-ones (Cypridina luciferin analogues). Photochem. Photobiol. Sci., 7(2), 197-207 (2008)[PubMed]

  16. C. Wu, K. Mino, H. Akimoto, M. Kawabata, K. Nakamura, M. Ozaki and Y. Ohmiya, In vivo far-red luminescence imaging of a biomarker based on BRET from Cypridina bioluminescence to an organic dye. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 106(37), 15599-15603 (2009)[PubMed]

  17. T. Noguchi, T. Michihata, W. Nakamura, T. Takumi, R. Shimizu, M. Yamamoto, M. Ikeda, Y. Ohmiya and Y. Nakajima, Dual-Color Luciferase Mouse Directly Demonstrates Coupled Expression of Two Clock Genes. Biochemistry, 49(37), 8053-8061 (2010)[PubMed]

  18. Y. Nakajima, T. Yamazaki, S. Nishii, T. Noguchi, H. Hoshino, K. Niwa, VR. Viviani, Y. Ohmiya, Enhanced Beetle Luciferase for High-Resolution Bioluminescence Imaging. PLoS One, 5(4), e10011 (2010)[PubMed]

  19. R. Ogura, N. Matsuo and K. Hiratsuka, Bioluminescence spectra of click beetle luciferase in higher plant cells. Plant Biotechnol., 28(4), 423-426 (2011)[Link]

  20. C. Wu, K. Kawasaki, S. Ohgiya and Y. Ohmiya, Chemical studies on the BRET system between the bioluminescence of Cypridina and quantum dots. Photochem. Photobiol. Sci., 10(10), 1531-1534 (2011)[PubMed]

  21. AKM. Kafi, M. Hattori, N. Misawa and T. Ozawa, Dual-Color Bioluminescence Analysis for Quantitatively Monitoring G-Protein-Coupled Receptor and β-Arrestin Interactions. Pharmaceuticals, 4(3), 457-469 (2011)[Link]

  22. D. Kato, K. Yokoyama, Y. Hiraishi, M. Takeo and S. Negoro, Comparison of Acyl-CoA Synthetic Activities and Enantioselectivity toward 2-Arylpropanoic Acids in Firefly Luciferases. Biosci. Biotechnol Biochem., 75(9), 1758-1762 (2011)[PubMed]

  23. SB. Kim, Y. Ito, and M. Torimura, Bioluminescent Capsules for Live-Cell Imaging. Bioconjug. Chem., 23(11), 2221-2228 (2012)[PubMed]

  24. SB. Kim, M. Torimura and H. Tao, Creation of Artificial Luciferases for Bioassays. Bioconjug. Chem., 24(12), 2067-2075 (2013)[PubMed]

  25. SB. Kim, T. Suzuki and A. Kimura, A Bioluminescent Assay System for Whole-Cell Determination of Hormones. Chem. Pharm. Bull., 61(7), 706-713 (2013)[PubMed]

  26. Y. Takenaka, A. Noda-Ogura, T. Imanishi, A. Yamaguchi, T. Gojobori and Y. Shigeri, Computational analysis and functional expression of ancestral copepod luciferase. Gene, 528(2), 201-205 (2013)[PubMed]

  27. S. Iwano, R. Obata, C. Miura, M. Kiyama, K. Hama, M. Nakamura, Y. Amano, S. Kojima, T. Hirano, S. Maki and H. Niwa, Development of simple firefly luciferin analogs emitting blue, green, red, and near-infrared biological window light. Tetrahedron, 69(19), 3847-3856 (2013)[Link]

  28. C. Miura, M. Kiyama, S. Iwano, K. Ito, R. Obata, T. Hirano, S. Maki and H. Niwa, Synthesis and luminescence properties of biphenyl-type firefly luciferin analogs with a new, near-infrared light-emitting bioluminophore. Tetrahedron, 69(46), 9726-9734 (2013)[Link]

  29. M. Hattori, S. Haga, H. Takakura, M. Ozaki, and T. Ozawa, Sustained accurate recording of intracellular acidification in living tissues with a photo-controllable bioluminescent protein. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 110(23), 9332-9337 (2013)[PubMed]

  30. D. Kato, T. Kubo, M. Maenaka, K. Niwa, Y. Ohmiya, M. Takeo and S. Negoro, Confirmation of color determination factors for Ser286 derivatives of firefly luciferase from Luciola cruciata (LUC-G). J. Mol. Catal. B Enzym., 87, 18-23 (2013)[Link]

  31. SB. Kim and H. Izumi, Functional artificial luciferases as an optical readout for bioassays. Biochem. Biophys. Res. Commun., 448(4), 418-423 (2014)[PubMed]

  32. M. Yasunaga, Y. Nakajima and Y. Ohmiya, Dual-color bioluminescence imaging assay using green- and red-emitting beetle luciferases at subcellular resolution. Anal. Bioanal. Chem., 406(23), 5735-5742 (2014)[PubMed]

  33. Y. Ishii, C. Hayashi, Y. Suzuki and T. Hirano, Chemiluminescent 2,6-diphenylimidazo[1,2-a]pyrazin-3(7H)-ones: a new entry to Cypridina luciferin analogues. Photochem. Photobiol. Sci., 13(2), 182-189 (2014)[PubMed]

  34. D. Kato, D. Shirakawa, R. Polz, M. Maenaka, M. Takeo, S. Negoro and K. Niwa, A firefly inspired one-pot chemiluminescence system using n-propylphosphonic anhydride (T3P). Photochem. Photobiol. Sci., 13(12), 1640-1645 (2014)[PubMed]

  35. SB. Kim, S. Miller, N. Suzuki, T. Senda, R. Nishihara and K. Suzuki, Cation-driven Optical Properties of Artificial Luciferases. Anal. Sci., 31(10), 955-960 (2015)[PubMed]

  36. T. Nishiguchi, T. Yamada, Y. Nasu, M. Ito, H. Yoshimura and T. Ozawa, Development of red-shifted mutants derived from luciferase of Brazilian click beetle Pyrearinus termitilluminans. J. Biomed. Opt., 20(10), 101205 (2015)[PubMed]

  37. GVM. Gabriel and VR. Viviani, Engineering the metal sensitive sites in Macrolampis sp2 firefly luciferase and use as a novel bioluminescent ratiometric biosensor for heavy metals. Anal. Bioanal. Chem., 408(30), 8881-8893 (2016)[PubMed]

  38. DT. Amaral, G. Oliveira, JR. Silva and VR. Viviani, A new orange emitting luciferase from the Southern-Amazon Pyrophorus angustus (Coleoptera: Elateridae) click-beetle: structure and bioluminescence color relationship, evolutional and ecological considerations. Photochem. Photobiol. Sci., 15(9), 1148-1154 (2016)[PubMed]

  39. S. Ioka, T. Saitoh, S. Iwano, K. Suzuki, S. Maki, A. Miyawaki, M. Imoto and S. Nishiyama, Synthesis of Firefly Luciferin Analogues and Evaluation of the Luminescent Properties. Chemistry, 22(27), 9330-9337 (2016)[PubMed]

  40. SB. Kim, R. Nishihara, D. Citterio and K. Suzuki, Genetically Encoded Molecular Tension Probe for Tracing Protein–Protein Interactions in Mammalian Cells. Bioconjug. Chem., 27(2), 354-362 (2016)[PubMed]

  41. T. Kuchimaru, S. Iwano, M. Kiyama, S. Mitsumata, T. Kadonosono, H. Niwa, S. Maki and S. Kizaka-Kondoh, A luciferin analogue generating near-infrared bioluminescence achieves highly sensitive deep-tissue imaging. Nat. Commun., 7, 11856 (2016)[PubMed]

  42. M. Kakiuchi, S. Ito, M. Yamaji, VR. Viviani, S. Maki and T. Hirano, Spectroscopic Properties of Amine-substituted Analogues of Firefly Luciferin and Oxyluciferin. Photochem. Photobiol., 93(2), 486-494 (2017)[PubMed]

  43. K. Teranishi, Second bioluminescence-activating component in the luminous fungus Mycena chlorophos. Luminescence, 32(2), 182-189 (2017)[PubMed]

  44. K. Teranishi, Inhibition of bioluminescence in the living gills of the luminous fungus Mycena chlorophos by trans-4-aminocinnamic acid. Biochem. Biophys. Res. Commun., 488(2), 335-339 (2017)[PubMed]

  45. SB. Kim, R. Nishihara, D. Citterio and K. Suzuki, Fabrication of a new lineage of artificial luciferases from natural luciferase pools. ACS Comb. Sci., 19(9), 594-599 (2017)[PubMed]

  46. N. Noda, R. Awais, R. Sutton, M. Awais and T. Ozawa, Dynamic monitoring of p53 translocation to mitochondria for the analysis of specific inhibitors using luciferase-fragment complementation. Biotechnol. Bioeng., 114(12), 2818-2827 (2017)[PubMed]

  47. M. Kiyama, S. Iwano, S. Otsuka, SW. Lu, R. Obata, A. Miyawaki, T. Hirano and SA. Maki, Quantum yield improvement of red-light-emitting firefly luciferin analogues for in vivo bioluminescence imaging. Tetrahedron, 74(6), 652-660 (2018)[Link]

  48. R. Nishihara, E. Hoshino, Y. Kakudate, S. Kishigami, N. Iwasawa, S. Sasaki, T. Nakajima, M. Sato, S. Nishiyama, D. Citterio, K. Suzuki and SB. Kim, Azide- and dye-conjugated coelenterazine analogues for a multiplex molecular imaging platform. Bioconjug. Chem., 29(6), 1922-1931 (2018)[PubMed]

  49. K. Teranishi, Bioluminescence and chemiluminescence abilities of trans-3-hydroxyhispidin on the luminous fungus Mycena chlorophos. Luminescence, 33(7), 1235-1242 (2018)[PubMed]

  50. R. Saito, T. Kuchimaru, S. Higashi, SW. Lu, M. Kiyama, S. Iwano, R. Obata, T. Hirano, S. Kizaka-Kondoh and SA. Maki, Synthesis and luminescence properties of near-infrared N-heterocyclic luciferin analogues for in vivo optical imaging. Bull. Chem. Soc. Jpn., 92(3), 608-618 (2019)[Link]

  51. N. Nomura, R. Nishihara, T. Nakajima, SB. Kim, N. Iwasawa, Y. Hiruta, S. Nishiyama, M. Sato, D. Citterio and K. Suzuki, Biothiol-activatable bioluminescent coelenterazine derivative for molecular imaging in vitro and in vivo. Anal. Biochem., 91(15), 9546-9553 (2019)[PubMed]

  52. R. Nishihara, R. Paulmurugan, T. Nakajima, E. Yamamoto, A. Natarajan, R. Afjei, Y. Hiruta, N. Iwasawa, S. Nishiyama, D. Citterio, M. Sato, SB. Kim and K. Suzuki, Highly bright and stable NIR-BRET with blue-shifted coelenterazine derivatives for deep-tissue imaging of molecular events in vivo. Theranostics, 9(9), 2646-2661 (2019)[PubMed]

  53. M. Abe, R. Nishihara, Y. Ikeda, T. Nakajima, M. Sato, N. Iwasawa, S. Nishiyama, R. Paulmurugan, D. Citterio, SB. Kim and K. Suzuki, Near infrared bioluminescence imaging with through-bond energy transfer cassette. Chembiochem., 20(15), 1919-1923 (2019)[PubMed]

  54. GC. Liu, R. Zhang, QB. Hou, JW. He, ZW. Dong, RP. Zhao, W. Wang and XY. Li, Cloning and characterization of luciferase from the Chinese firefly Lamprigera yunnana. Photochem. Photobiol., 95(5), 1186-1194 (2019)[PubMed]

  55. GC. Liu, ZW. Dong, QB. Hou, JW. He, RP. Zhao, W. Wang and XY. Li, Second Rhagophthalmid luciferase cloned from Chinese glow-worm Menghuoius giganteus (Rhagophthalmidae: Elateroidea). Photochem. Photobiol., 96(1), 46-54 (2020)[PubMed]

  56. K. Ogoh, R. Akiyoshi and H. Suzuki, Cloning and mutagenetic modification of the firefly luciferase gene and its use for bioluminescence microscopy of engrailed expression during Drosophila metamorphosis. Biochem. Biophys. Rep., 23, 100771 (2020)[PubMed]

  57. N. Kitada, R. Saito, R. Obata, S. Iwano, K. Karube, A. Miyawaki, T. Hirano and SA. Maki, Development of near-infrared firefly luciferin analogue reacted with wild-type and mutant luciferases. Chirality, 32(7), 922-931 (2020)[PubMed]

  58. J. Nakayama, R. Saito, Y. Hayashi, N. Kitada, S. Tamaki, Y. Han, K. Semba and SA. Maki, High sensitivity in vivo imaging of cancer metastasis using a near-infrared luciferin analogue seMpai. Int. J. Mol. Sci., 21(21), 7896 (2020)[PubMed]

  59. Y. Oba, K. Konishi, D. Yano, H. Shibata, D. Kato and T. Shirai, Resurrecting the ancient glow of the fireflies. Sci. Adv., 6(49), eabc5705 (2020)[PubMed]

  60. Y. Mizui, M. Eguchi, M. Tanaka, Y. Ikeda, H. Yoshimura, T. Ozawa, D. Citterio and Y. Hiruta, Long-term single cell bioluminescence imaging with C-3 position protected coelenterazine analogues. Org. Biomol. Chem., 19(3), 579-586 (2021)[PubMed]

  61. S. Tamaki, N. Kitada, M. Kiyama, R. Fujii, T. Hirano, SB. Kim and S. Maki, Color‑tunable bioluminescence imaging portfolio for cell imaging. Sci. Rep., 11(1), 2219 (2021)[PubMed]

  62. JW. He, GC. Liu, PX. Dong, ZW. Dong, RP. Zhao, W. Wang and XY. Li, Molecular cloning, characterization, and evolution analysis of the luciferase genes from three sympatric sibling fireflies (Lampyridae: Lampyrinae, Diaphanes). Photocem. Photobiol. Sci., 20(8), 1053-1067 (2021)[PubMed]

  63. K. Teranishi, Non-invasive and accurate readout of superoxide anion in biological systems by near-infrared light. Anal. Chim. Acta., 1179, 338827 (2021)[PubMed]

  64. S. Kanie, D. Miura, N. Jimi, T. Hayashi, K. Nakamura, M. Sakata, K. Ogoh, Y. Ohmiya and Y. Mitani, Violet bioluminescent Polycirrus sp. (Annelida: Terebelliformia) discovered in the shallow coastal waters of the Noto Peninsula in Japan. Sci. Rep., 11(1), 19097 (2021)[PubMed]

  65. E. Belleti, VR. Bevilaqua, AMM. Brito, DA. Modesto, AJC. Lanfredi, VR. Viviani and IL. Nantes‑Cardoso, Synthesis of bioluminescent gold nanoparticle–luciferase hybrid systems for technological applications. Photochem. Photobiol. Sci., 20(11), 1439-1453 (2021)[PubMed]

  66. Y. Ikeda, M. Orioka, T. Nomoto, Y. Hiruta, N. Nishiyama and D. Citterio, Differential Effect of azetidine substitution in firefly luciferin analogues. Chembiochem, 22(21), 3067-3074 (2021)[PubMed]

Fermograf AF-1101W

  1. Pham Van Hung, Tomoko Maeda, Hiroaki Yamauchi, Naofumi Morita, Vetitë e brumit dhe prodhimit të bukës së kokrrave të ndryshme të forta të grurit të kultivuara në Japoni. J. Appl. Glycosci., 52, 15-21 (2005) [Lidhje]

  2. Kanenori Tanaka, Zenta Nishio, Norio Iriki, Tadashi Tabiki, Wakako Funatsuki, Hiroaki Yamanouchi, Krahasimi i karakteristikave të cilësisë së grurit dylli duke përdorur një linjë afër izogjene, Shkenca e mbarështimit 55, 87-92 (2005) [Lidhje]

  3. Sadako Takasaki, Yoji Kato, Masatsune Murata, Seiichi Homma, Shunro Kawakishi, Efektet e peroksidazës dhe peroksidit të hidrogjenit në formimin e ditirozinës dhe karakteristikat e përzierjes së brumit të miellit të grurit, Biosci. Bioteknol. Biochem., 69 (9), 1686-1692 (2005) [PubMed]

  4. Miwako Ito, Shun-Ju Kim, Zaidul-Islam Sarker, Naoto Hashimoto, Takahiro Noda, Shigenobu Takigawa, Chie Matsuura-Endo, Tetsuya Horibata, Yoshihiko Nakamura, Naoyoshi Inouchi, Michihiro Fukushima, Hiroaki Yamauchi i përgatitur nga buka e re dhe tekstura, Varietetet e grurit të bukës japoneze me niseshte paksa të ulët amilozë, Food Sci. Teknol. Res., 13 (2), 121-128 (2007) [Lidhje]

  5. Tomohiro Kaino, Tetsuya Tateiwa, Satomi Mizukami-Murata, Jun Shima, Hiroshi Takagi, Maja vetëklonuese e bukës që grumbullon prolinë rrisin tolerancën e ngrirjes në brumë, Appl. Mjedisi. Microbiol., 74(18), 5845-5849 (2008) [PubMed]

  6. Daisuke Watanabe, Tomonori Ota, Fusajiro Nitta, Takeshi Akao, Hitoshi Shimoi, Matja automatike e kinetikës së fermentimit sake duke përdorur një sistem monitorimi të gazit me shumë kanale, J. Biosci. Bioeng., 112 (1), 54-57 (2011) [PubMed]

  7. Daisuke Watanabe, Satoru Nogami, Yoshikazu Ohya, Yoichiro Kanno, Yan Zhou, Takeshi Akao, Hitoshi Shimoi, Fermentimi i etanolit i nxitur nga shprehja e ngritur e gjenit të ciklin G1 CLN3 në maja sake, J. Biosci. Bioeng., 112 (6), 577-582 (2011) [PubMed]

  8. Chiemi Noguchi, Daisuke Watanabe, Yan Zhou, Takeshi Akao, Hitoshi Shimoi, Shoqata e hiperfosforilimit konstituiv të Hsf1p me një përgjigje të dëmtuar të stresit të etanolit në shtamet e majave të Sakcharomyces cervisiae, Appl. Mjedisi. Microbiol., 78 (2), 385-392 (2012) [PubMed]

  9. Daisuke Watanabe, Yuya Araki, Yan Zhou, Naoki Maeya, Takeshi Akao, Hitoshi Shimoi, Një Mutacion i Humbjes së Funksionit në Rim15p Kinase PAS është i lidhur me hyrjen në qetësi me defekt dhe shkalla e lartë e fermentimit të Saccharomyces cerevisiae, Appliacijae. Mjedisi. Microbiol., 78 (11), 4008-4016 (2012) [PubMed]

Fermograph
bottom of page